导读:本文包含了苄基腺嘌呤论文开题报告文献综述、选题提纲参考文献及外文文献翻译，主要关键词:嘌呤,高效,乙酸,色谱,氯苯,液相,豆芽。
苄基腺嘌呤论文文献综述
容裕棠,陈丽斯,张朋杰,张宪臣,卢俊文[1]（2019）在《DLLME-UPLC-MS/MS法测定豆芽中6-苄基腺嘌呤残留》一文中研究指出建立豆芽中6-苄基腺嘌呤残留的分散液液微萃取-超高效液相色谱-串联质谱检测方法。试验采用富集因子评价萃取效率,考察影响萃取效率的主要因素,主要有萃取剂类型及其用量、分散剂类型及其用量、超声辅助萃取时间、盐浓度、p H等。结果表明,在最佳萃取条件下(四氯乙烷100μL、甲醇1 mL、水5 mL、氯化钠1.5 g/mL、超声时间10 min),该法对6-苄基腺嘌呤具有较高的富集能力,富集因子为39.1～44.3。方法检出限为0.5μg/kg,定量低限为1.5μg/kg。在0.2～100 ng/mL范围内峰强度与质量浓度的线性关系良好(r>0.99)。方法的回收率为68.4%～70.3%。该方法具有简单、快速、稳定、灵敏度高和使用有机试剂少等特点,适合于实验室快速筛查检测。(本文来源于《食品工业》期刊2019年08期）
高宗林,曹旭妮[2]（2019）在《二维液相色谱测定绿豆芽中赤霉素、6-苄基腺嘌呤、4-氯苯氧乙酸和2,4-二氯苯氧乙酸》一文中研究指出在豆芽食品中对添加的植物生长调节剂的监控是十分重要的。在此基础上建立了绿豆芽抽提样品中赤霉素、6-苄基腺嘌呤、4-氯苯氧乙酸和2,4-二氯苯氧乙酸4种植物生长调节剂的二维液相色谱定量分析方法。实验中以ZB-10 C18(ODS-AP,10 mm×10 mm)为第一维色谱柱,V(甲酸)∶V(甲醇)∶V(水)=1∶10∶89溶液等度洗脱,实现绿豆芽样品的前处理净化;随后通过阀切换将分析物转移至第二维色谱柱(Supersil ODS 2. 5μm,4. 6 mm×150 mm),以甲醇-0. 1%甲酸水溶液为流动相梯度洗脱,并以紫外254 nm为检测波长实现上述4种植物生长调节剂的分离分析。该方法中,赤霉素、6-苄基腺嘌呤、4-氯苯氧乙酸和2,4-二氯苯氧乙酸的线性范围分别为0. 004~2、0. 000 1~0. 2、0. 005~2以及0. 008~2 mg/m L,检出限分别为1. 4、0. 03、1. 6、2. 4μg/m L;峰面积的RSD为2%~3%,回收率为95%~104%。实际样品的分析中,发现该绿豆芽样品中赤霉素和2,4-二氯苯氧乙酸的添加量为0. 018 mg/g和0. 006 mg/g,4-氯苯氧乙酸未检出。另外,还发现样品中由于存在干扰物而不能准确定量分析低浓度的6-苄基腺嘌呤。研究表明,该方法可以应用于绿豆芽的直接抽提样品,对其中的赤霉素、4-氯苯氧乙酸和2,4-二氯苯氧乙酸能准确进行定量分析,不需进一步的样品前处理。(本文来源于《化学试剂》期刊2019年01期）
邹沫君,陈艳,肖燕[3]（2018）在《高效液相色谱法测定果汁中6-苄基腺嘌呤残留量》一文中研究指出为了建立高效液相色谱法测定果汁中6-苄基腺嘌呤残留量的检测方法,样品经甲醇超声提取, C_(18)固相萃取柱净化,浓缩定容后直接进样分析。结果表明:该方法在0.10～0.60μg·mL~(-1)范围内线性关系良好(R~2=0.999 6),加标回收率为99.00%～100.67%(加标浓度为1.0, 0.50和0.20μg·mL~(-1)), RSD值为0.31%～0.79%(n=6),方法检出限为7.58×10~(-3)μg·kg~(-1),定量限为2.53×10~(-2)μg·kg~(-1),重复性(n=6)为1.1%,整个提取分离测定流程快速、简便、准确、毒性小,适用于果汁饮料中6-苄基腺嘌呤残留量的测定。(本文来源于《食品工业》期刊2018年11期）
李玥颖[4]（2018）在《高效液相色谱-质谱测定豆芽中4-氯苯氧乙酸钠和6-苄基腺嘌呤残留》一文中研究指出目的:采用高效液相色谱-质谱法对豆芽中的4-氯苯氧乙酸钠和6-苄基腺嘌呤残留进行测定。方法:对样品中的4-氯苯氧乙酸钠和6-苄基腺嘌呤进行提取纯化,并采用高效液相色谱-质谱进行测定。结果:4-氯苯氧乙酸钠、6-苄基腺嘌呤线性回归方程、线性范围和检出限、精密度、回收率均较好。5个商家的绿豆芽均存在4-氯苯氧乙酸钠和6-苄基腺嘌呤残留,残留量在0.05~0.14 mg/kg。结论:高效液相色谱-质谱可以准确测定豆芽中4-氯苯氧乙酸钠和6-苄基腺嘌呤残留。(本文来源于《现代食品》期刊2018年15期）
黄锐,廖建萌,曾丹丹,黄国方[5]（2018）在《花生芽中6-苄基腺嘌呤的测定方法研究》一文中研究指出建立了高效液相色谱法测定花生芽中6-苄基腺嘌呤含量的方法。6-苄基腺嘌呤的检测波长为267nm;流动相为甲醇-20mmol/L乙酸铵溶液(50:50,v/v);前处理的提取方式为超声波提取法;高效液相色谱法测定花生芽中6-苄基腺嘌呤含量的在1-50mg/L范围线性良好,相关系数为0.9998,检出限为0.1mg/kg,精密度为1.82%,用该方法测定花生芽中6-苄基腺嘌呤含量的回收率在90%以上。(本文来源于《食品安全导刊》期刊2018年14期）
罗淑芬,孙凤杰,胡花丽,周宏胜,张雷刚[6]（2018）在《6-苄基腺嘌呤对鲜莲子活性氧代谢及能量水平的影响》一文中研究指出为探讨6-苄基腺嘌呤(6-BA)对鲜莲子活性氧代谢及能量水平的影响,以清水浸泡为对照,在25±1℃条件下,用20 mg·L-16-BA对莲蓬太空莲36号进行处理,研究其贮藏期间感官品质变化及呼吸作用强度,并分析莲子活性氧水平,抗氧化酶活性,丙二醛(MDA)、叁磷酸腺苷(ATP)、二磷酸腺苷(ADP)、磷酸腺苷(AMP)含量以及能荷水平的变化。结果表明,与对照相比,6-BA处理可有效抑制莲蓬呼吸作用、莲子活性氧水平上升及MDA的积累,且保持抗氧化酶活性的同时,维持了莲子较高的能荷水平,从而延缓了鲜莲蓬和莲子品质的下降,使其贮藏期延长了3~4 d。综上,6-BA处理对减缓莲蓬和莲子采后衰老具有显着效果,本研究为鲜莲蓬和莲子采后保鲜提供了理论及技术支持。(本文来源于《核农学报》期刊2018年05期）
侯琨,渡边正树,王大利,韩晶,李永路[7]（2018）在《低温分配固液萃取结合高效液相色谱-质谱法测定食用菌中6-苄基腺嘌呤》一文中研究指出建立了低温分配固液萃取(SLE-LTP)技术结合高效液相色谱-质谱(HPLC-MS)测定食用菌中6-苄基腺嘌呤(6-BA)的方法。食用菌样品经乙腈提取和低温分配,采用Hitachi LaChrom C18色谱柱(250 mm×4.6 mm,5μm)分离,以0.02 mol/L乙酸铵(含0.1%(v/v)冰乙酸)-甲醇(6∶4,v/v)溶液为流动相,等度洗脱,在电喷雾正离子模式下检测,外标法定量。结果表明,6-苄基腺嘌呤在0.05~2.0 mg/L范围内线性关系良好,相关系数为1.000 0;方法的检出限和定量限分别为0.006 mg/kg和0.02 mg/kg。加标回收率试验显示在0.1 mg/kg和0.5mg/kg添加水平下6-苄基腺嘌呤的加标回收率为81.3%~93.7%,相对标准偏差为0.7%~2.4%。该法简单、准确、稳定,可用于食用菌中6-苄基腺嘌呤的检测。(本文来源于《色谱》期刊2018年01期）
崔冠峰,任昕昕,王爱华,宋歌,董林沛[8]（2017）在《GC/MS检测血中的6-苄基腺嘌呤》一文中研究指出6-苄氨基嘌呤(6-Benzylaminopurine),又名6-苄基腺嘌呤,简称6-BA,分子式为C12H11N5,分子量为225.2,结构式见图1。6-苄氨基嘌呤是一种人工合成的细胞分裂素,其主要作用是促进细胞的分裂和扩大,促进侧芽的发育,抑制衰老、保绿等,具有诱导同化物向施用部位定向运输的作用,广泛用在农业、果树和园艺作物从发芽到收获的各个阶段。6-苄氨基嘌呤属低毒类农药,相较于管控严格、检测手段完善的传统的特剧毒类、剧毒类和高毒类农药,此类药物更易获取,近年来常被犯罪分子用以实施蓄意投毒和破坏生产经营,危害食品安全等,尤其在豆芽生产过程中的添加滥用现象更为普遍[1]。在司法鉴定系统中,由于在投毒、自杀等案件中常见的物证材料多为被害人的血、尿及现场遗留的药瓶等,因此建立生物检材中快速灵敏的检验方法,并利用简单的动物模型,反应其在血液中的代谢情况以解决案件中的检验难题,是法庭科学的实际工作中的现实需要。本研究考察血中6-苄基腺嘌呤的提取方法,并对几种不同方法进行比较优化,选择了简单、快速、回收率相对较高的液液萃取提取方法。建立了GC/MS检测血中6-苄基腺嘌呤分析方法,所建方法不受生物体液中内源性杂质的干扰且分离度好,通过色谱保留时间(图2)、离子碎片及子离子质谱信息(图3)进行定性定量分析,保证了检测结果的真实可靠。根据6-苄基腺嘌呤的药效性质和案件特点,建立了小剂量染毒动物模型,提取血液用本研究所建立的方法进行验证,获得6-苄基腺嘌呤在染毒大鼠血液内浓度的相关数据。研究获得该方法在6-苄基腺嘌呤浓度0.5μg-100μg/mL的范围内标准工作曲线为:y=13369x-34074;血中添加6-苄基腺嘌呤0.5μg-100μg/mL的范围内标准工作曲线为:y=31353x-38125;线性关系显着(相关系数均大于0.999)。方法最低检出限为0.3μg/mL;回收率在82.1%-88.7%范围内;日内精密度介于3.42-5.85%之间,日间精密度介于4.87-8.33%之间。本研究建立了血中6-苄基腺嘌呤的液-液萃取前处理方法和GC/MS方法。所建立的方法回收率高、重现性好、提取产物较干净。添加的平均回收率在80%以上,方法简便快速、灵敏度高、重现性好、结果准确可靠,为进一步研究6-苄基腺嘌呤的染毒动物实验及稳定性考察提供了技术手段。本研究方法可满足涉及此两种植物生长调节剂中毒案件的检测。(本文来源于《第叁届全国质谱分析学术报告会摘要集-分会场5：有机/生物质谱新方法》期刊2017-12-09）
芦智远,冯歆轶,汪静雯,徐斐,杨琦[9]（2017）在《固相萃取–高效液相色谱法测定豆芽中4-氯苯氧乙酸钠和6-苄基腺嘌呤的残留量》一文中研究指出建立了测定豆芽中4-氯苯氧乙酸钠和6-苄基腺嘌呤的固相萃取–高效液相色谱法。样品以0.1 mol/L的盐酸溶液为提取剂,经C18固相萃取柱净化处理,以乙腈–10 mmol/L乙酸铵水溶液(体积比25∶75)为流动相,Tech Mate C_(18)–ST色谱柱分离,4-氯苯氧乙酸钠和6-苄基腺嘌呤的紫外检测波长分别为228 nm和267 nm,色谱峰面积外标法定量。在0.50~100.00 mg/L浓度范围内,4-氯苯氧乙酸钠的相关系数为0.999 8,精密度在1.3%~8.2%之间(n=6),回收率在103.1%~109.0%之间;在0.05~10 mg/L浓度范围内,6-苄基腺嘌呤相关系数为0.999 9,精密度在0.9%~3.8%之间(n=6),回收率在88.0%~95.4%之间。4-氯苯氧乙酸钠和6-苄基腺嘌呤的检出限(S/N=3)分别为0.24,0.02 mg/kg。该法可以同时完成豆芽中4-氯苯氧乙酸钠和6-苄基腺嘌呤的分析检测。(本文来源于《化学分析计量》期刊2017年05期）
周洲[10]（2017）在《默科特花期施苄基腺嘌呤果实增大》一文中研究指出据《Scientia Horticulturae》的一篇研究报道(https://doi.org/10.1016/j.scienta.2017.05.030),来自智利瓦尔帕莱索天主教大学的Carlos Ferrer等人研究了花施苄基腺嘌呤对默科特柑桔果实大小的影响。果实发育涉及细胞分裂和细胞伸长,该过程由赤霉素、细胞分裂素和生长素等激素信号进行调节。在足够的内部激素存在时,苄基腺嘌呤(BA)能够刺激细胞分裂。开花后施用BA,可以促进果实初期发育,与内源细胞分裂素的作用类似。研究(本文来源于《中国果业信息》期刊2017年08期）
苄基腺嘌呤论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
在豆芽食品中对添加的植物生长调节剂的监控是十分重要的。在此基础上建立了绿豆芽抽提样品中赤霉素、6-苄基腺嘌呤、4-氯苯氧乙酸和2,4-二氯苯氧乙酸4种植物生长调节剂的二维液相色谱定量分析方法。实验中以ZB-10 C18(ODS-AP,10 mm×10 mm)为第一维色谱柱,V(甲酸)∶V(甲醇)∶V(水)=1∶10∶89溶液等度洗脱,实现绿豆芽样品的前处理净化;随后通过阀切换将分析物转移至第二维色谱柱(Supersil ODS 2. 5μm,4. 6 mm×150 mm),以甲醇-0. 1%甲酸水溶液为流动相梯度洗脱,并以紫外254 nm为检测波长实现上述4种植物生长调节剂的分离分析。该方法中,赤霉素、6-苄基腺嘌呤、4-氯苯氧乙酸和2,4-二氯苯氧乙酸的线性范围分别为0. 004~2、0. 000 1~0. 2、0. 005~2以及0. 008~2 mg/m L,检出限分别为1. 4、0. 03、1. 6、2. 4μg/m L;峰面积的RSD为2%~3%,回收率为95%~104%。实际样品的分析中,发现该绿豆芽样品中赤霉素和2,4-二氯苯氧乙酸的添加量为0. 018 mg/g和0. 006 mg/g,4-氯苯氧乙酸未检出。另外,还发现样品中由于存在干扰物而不能准确定量分析低浓度的6-苄基腺嘌呤。研究表明,该方法可以应用于绿豆芽的直接抽提样品,对其中的赤霉素、4-氯苯氧乙酸和2,4-二氯苯氧乙酸能准确进行定量分析,不需进一步的样品前处理。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
苄基腺嘌呤论文参考文献
[1].容裕棠,陈丽斯,张朋杰,张宪臣,卢俊文.DLLME-UPLC-MS/MS法测定豆芽中6-苄基腺嘌呤残留[J].食品工业.2019
[2].高宗林,曹旭妮.二维液相色谱测定绿豆芽中赤霉素、6-苄基腺嘌呤、4-氯苯氧乙酸和2,4-二氯苯氧乙酸[J].化学试剂.2019
[3].邹沫君,陈艳,肖燕.高效液相色谱法测定果汁中6-苄基腺嘌呤残留量[J].食品工业.2018
[4].李玥颖.高效液相色谱-质谱测定豆芽中4-氯苯氧乙酸钠和6-苄基腺嘌呤残留[J].现代食品.2018
[5].黄锐,廖建萌,曾丹丹,黄国方.花生芽中6-苄基腺嘌呤的测定方法研究[J].食品安全导刊.2018
[6].罗淑芬,孙凤杰,胡花丽,周宏胜,张雷刚.6-苄基腺嘌呤对鲜莲子活性氧代谢及能量水平的影响[J].核农学报.2018
[7].侯琨,渡边正树,王大利,韩晶,李永路.低温分配固液萃取结合高效液相色谱-质谱法测定食用菌中6-苄基腺嘌呤[J].色谱.2018
[8].崔冠峰,任昕昕,王爱华,宋歌,董林沛.GC/MS检测血中的6-苄基腺嘌呤[C].第叁届全国质谱分析学术报告会摘要集-分会场5：有机/生物质谱新方法.2017
[9].芦智远,冯歆轶,汪静雯,徐斐,杨琦.固相萃取–高效液相色谱法测定豆芽中4-氯苯氧乙酸钠和6-苄基腺嘌呤的残留量[J].化学分析计量.2017
[10].周洲.默科特花期施苄基腺嘌呤果实增大[J].中国果业信息.2017
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