血清乙酰胆碱受体抗体阳性重症肌无力患者外周血BLySmRNA的表达及其与乙酰胆碱受体抗体的关系

血清乙酰胆碱受体抗体阳性重症肌无力患者外周血BLySmRNA的表达及其与乙酰胆碱受体抗体的关系

舒孔亮1张燕2

(1长沙市第一医院神经内科410005;2中南大学湘雅二医院精神科410011)

重症肌无力(MyastheniaGravis,MG)是一种神经-肌肉接头处传递障碍的自身免疫性疾病,乙酰胆碱受体(acetylcholinereceptor,AChR)抗体是MG最主要的自身抗体。B淋巴细胞刺激因子(Blymphocytestimulator,BLyS)是新近发现的关于B细胞存活、活化的重要细胞因子,与免疫反应密切相关,我们观察了BLySmRNA在血清AChR抗体阳性MG患者的表达并分析了其与血清AChR抗体水平的关系,以探讨BLyS在MG发病中的地位和作用。

1资料与方法

1.1研究对象及分组:于2010年8月~2012年8月,收集在长沙市第一医院、中南大学湘雅二医院就诊、根据临床和辅助检查诊断为血清AChR抗体阳性MG患者35例为MG组,与入MG组病人年龄、性别相匹配的长沙市第一医院体检健康者19例为对照组。上述两组中有下列情况之一者已排除:①发病前3个月内曾使用激素或免疫抑制剂者。②伴有其他自身免疫性疾病者。两组研究对象年龄、性别无统计学差异。见表1。

表1研究对象一般资料

1.2试验方法:取MG患者和正常对照者肘静脉血10ml。7ml静脉血肝素(50u/ml静脉血)抗凝,摇匀,用于分离单个核细胞。3ml静脉血不抗凝,室温下凝固后分离血清,-20℃下冷冻保存备用。选用Ficoll分层液法,即一种单次密度梯度离心分离法,分离得到单个核细胞(淋巴细胞、单核细胞)。逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)法检测MG组和对照组外周静脉血单个核细胞BLySmRNA的表达。BlyS和β-actin引物参考PascalSchneider等人的文献[1],由上海博亚生物技术有限公司合成。其序列,产物长度及实验时的退火温度见表2,PCR反应体系为25μl同管扩增,PCR反应条件:①预变性:95℃,5分钟②变性:94℃,1分钟③退火:温度见表2,1分钟④延伸:72℃,1分钟,②~④共30个循环,72℃终末延伸10分钟。用间接ELISA法检测MG患者血清AChR抗体IgG型,AChR由美国德州大学医学院Christados教授惠赠,包被时将纯化的AChR用PH值9.6的碳酸盐/碳酸氢盐缓冲液稀释到0.5ug/ml。检测时每份血清稀释100倍,HRP-羊抗人IgG抗体稀释1000倍,以有无显色反应判断结果的阴、阳性,用酶标仪读取450nm/630nm处的OD值。

表2PCR引物序列、产物长度及实验时的退火温度

1.3统计处理:本实验测定的计量资料数值用均数±标准差(x-±s)表示。两个独立样本均数间的比较用成组t检验,双变量正态分布的两变量间的相关性分析用Bivariatecorrelate检验。以P值<0.05为差异有显著性。所有数据使用SPSS11.5软件进行统计分析。

2结果

2.1BLySmRNA在MG组、正常对照组中的表达水平比较

实验发现(见表3),BLySmRNA在MG组单个核细胞的表达水平明显高于正常对照组,差异有统计学意义(P<0.01)。正常对照组中有少量表达。数据表明BLySmRNA在MG组中的表达上调。

表3MG组、正常对照组间BLySmRNA表达水平比较(x-±s)

注:△与正常对照组比较P<0.01

2.2MG患者BLySmRNA表达水平与IgG型AChR抗体水平相关性分析

对MG组外周血单个核细胞BLySmRNA表达、血清IgG型AChR抗体水平进行相关性分析(见表4)。结果发现,外周血单个核细胞BLySmRNA表达与血清IgG型AChR抗体水平呈正相关(P<0.01)。

表4MG组BLySmRNA表达水平与AChR抗体水平相关性分析

注:※MG组BLySmRNA表达水平与AChR抗体水平相关系数,P<0.01

3讨论

BLyS又称BAFF(BcellactivatingfactorbelongingtotheTNFfamily),或TALL-1(TNF-andAPOL-relatedleukocyteexpressedligand1),THANK(TNFhomologthatactivatesapoptosis,NFKBandJNK),zTNF4,属肿瘤坏死因子(TNF)超家族成员,于1999年由几个小组几乎同时发现[2,1,3,4],它主要作用于B细胞,为B细胞的发育、分化、成熟提供生存信号。在BLyS缺陷鼠,外周B细胞的发育停滞于T1-B细胞(transitionaltypeⅠBcell)阶段[5,6],不能继续发育成熟;给与外源性BLyS或BLyS过量表达,成熟B细胞的数目明显增加[1,3,7]。

本研究发现血清AChR抗体阳性MG患者外周血单个核细胞BLySmRNA的表达较正常人升高,该表达升高可能与其免疫系统稳态的破坏有关。研究发现BLyS有两个不同的来源,一个是由抗辐射细胞(可能是淋巴样器官的基质细胞)持续的以固定量生产的BLyS池[8,9];另一个是由细胞因子诱导的由骨髓起源的细胞如单核细胞、巨噬细胞、树突状细胞局部产生的BLyS附加池,许多炎性细胞因子,特别是干扰素γ和白细胞介素10(interleukin-10,IL-10)能上调BLyS的表达[10],由细胞因子诱导的BLyS池能使额外的B细胞在局部如炎症部位暂时的积聚[8,9,11-14]。实验表明骨髓起源的细胞不是BLyS的主要来源[8]。基于这些我们认为由于MG患者AChR的自身耐受被打破,启动了针对自身抗原的免疫应答,单核细胞、巨噬细胞、树突状细胞作为抗原呈递细胞参与免疫应答反应,在免疫应答过程中增殖、活化。同时IL-10等细胞因子在MG患者的自身免疫应答过程中的表达也上升,从而诱导激活的单核细胞、巨噬细胞、树突状细胞等产生更多BLyS,造成了MG患者BLyS表达的过量。

本研究发现血清AChR抗体阳性MG患者外周血单个核细胞BLySmRNA的表达与血清IgG型AChR抗体水平呈正相关,其原因可能与以下几方面相关:①BLyS影响自身反应性B细胞:自身反应性B细胞是直接产生自身抗体的淋巴细胞,在自身免疫性疾病中起重要作用,Thien等[15]研究发现,过量的BLyS对自身反应性B细胞的正常清除有挽救作用,当BLyS过量时可能有一些自身反应性B细胞由于环境中生存信号水平的增强而存活。②BLyS和长寿浆细胞及记忆B细胞:Avery等[16]所作的体外研究发现BLyS通过抗凋亡作用选择性的增强由记忆B细胞转化的浆细胞的存活。③BLyS影响B细胞表面CD分子:已有研究发现BLyS刺激增强了CD19和CD21的表达[17],[18]。CD19和CD21是B细胞共受体的一部分,它们与CD81一起与BCR交联可以降低B细胞活化的阈值[19]。

我们设想在血清AChR抗体阳性MG患者,当AChR的自身耐受被打破后,在细胞因子的诱导下BLyS附加池产生更多BLyS,形成了BLyS表达的过量,一方面造成外周成熟B细胞数量增多,增加了针对自身抗原免疫的机会;另一方面产生更多的AChR抗体,增加了针对神经肌肉接头处免疫侵袭的强度;并且BLyS的过量表达有可能形成恶性循环,从而导致疾病持续进行甚至加重。

参考文献

[1]SchneiderP,MackayF,SteinerV,etal.BAFF,anovelligandofthetumornecrosisfactorfamily,stimulatesBcellgrowth.JExpMed,1999,189(11):1747-1756.

[2]ShuHB,HuW,JohnsonH.TALL-1isanovelmemberoftheTNFfamilythatisdown-regulatedbymitogens.JLeukocBiol,1999,65(5):680-683.

[3]SchneiderP,MacKayF,SteinerV,etal.BAFF,anovelligandofthetumornecrosisfactorfamily,stimulatesBcellgrowth.JExpMed.1999Jun7;189(11):1747-56.

[4]MoorePA,BelvedereO,OrrA,etal.BLyS:memberofthetumornecrosisfactorfamilyandBlymphocytestimulator.Science1999;285(5425):260-263.

[5]GrossJA,DillionSR,MudriS,etal.TACI-IgneutralizesmoleculescriticalforBcelldevelopmentandautoimmunedisease.impairedBcellmaturationinmicelackingBLyS.Immunity,2001,15(2):289-302.

[6]SchiemannB,GommermanJL,VoraK,etal.AnessentialroleforBAFFinthenormaldevelopmentofBcellsthroughaBCMA-independentpathway.Science,2001,293(5537):2111-2114.

[7]HahneM,KataokaT,SchroterM,etal.APRIL,anewligandofthetumornecrosisfactorfamily,stimulatestumorcellgrowth.JExpMed,1998,188(6):1185-1190.

[8]SprentJ,BastenA.CirculatingTandBlymphocytesofthemouse.II.Lifespan.CellImmunol1973;7:40.

[9]OsmondDG.TheturnoverofBcellpopulations.Immunol.Today1993;14:34-37.

[10]ZhangJ,RoschkeV,BakerKP,etal.Cuttingedge:aroleforBlymphocytestimulatorinsystemiclupuserythematosus.JImmunol,2001,Jan1,166(1):6-10.

[11]AllmanDM,FergusonSE,CancroMP.PeripheralBcellmaturationI.ImmatureperipheralBcellsinadultsareheatstableantigenhiandexhibituniquesignalingcharacteristics.JImmunol1992;149(8):2533-2540.

[12]AllmanDM,FergusonSE,LentzVM,etal.PeripheralBcellmaturation.II.Heat-stableantigen(hi)splenicBcellsareanimmaturedevelopmentalintermediateintheproductionoflong-livedmarrow-derivedBcells.JImmunol1993;151(9):4431-4444.

[13]CancroMP,AllmanDM,HayesCE,etal.BCellMaturationandSelectionattheMarrow-PeripheryInterface.ImmunologicResearch1998;17:3-11.

[14]RolinkAG,AnderssonJ,MelchersF.CharacterizationofimmatureBcellsbyanovelmonoclonalantibody,byturnoverandbymitogenreactivity.EurJImmunol1998;28(11):3738-48.

[15]PoeJC,HasegawaM,TedderTF.CD19,CD21andCD22:multifacetedresponseregulatorsofBlymphocytesignaltransduction.IntRevImmunol.2001;20:739-762.

[16]CraxtonA,MagalettiD,RyanEJ,etal.Macrophage-anddendriticcell-dependentregulationofhumanB-cellproliferationrequirestheTNFfamilyligandBAFF.Blood2003,101:4464-4471.

[17]OsmondDG.PopulationdynamicsofbonemarrowBlymphocytes.ImmunolRev1986;93:103-124.

[18]StrasserA,O'ConnorL,HuangDC,etal.Lessonsfrombcl-2transgenicmiceforimmunology,cancerbiologyandcelldeathresearch.BehringInstituteMitteilungen1996(97):101-117.

[19]GrillotDA,MerinoR,PenaJC,etal.bcl-xexhibitsregulatedexpressionduringBcelldevelopmentandactivationandmodulateslymphocytesurvivalintransgenicmice.JournalofExperimentalMedicine1996;183(2):381-391.

标签:;  ;  ;  

血清乙酰胆碱受体抗体阳性重症肌无力患者外周血BLySmRNA的表达及其与乙酰胆碱受体抗体的关系
下载Doc文档

猜你喜欢