鸭坦布苏病毒E蛋白单克隆抗体的制备及其ELISA试剂盒的研制

鸭坦布苏病毒E蛋白单克隆抗体的制备及其ELISA试剂盒的研制

论文摘要

目前,我国江苏、重庆、福建、浙江、江西、山东等多省爆发鸭坦布苏病毒病,给我国养鸭业带来了严重经济损失。虽对该疫病的检测方法较多,但尚无商品化的检测试剂盒来方便快捷地检测DTMUV的感染。基于本实验室现有的CQW1株鸭坦布苏病毒(GenBank登录号:KM233707.1)的重组E蛋白,本研究制备出抗DTMUV单克隆抗体,并研制出检测试剂盒,为试剂盒的商业化发展奠定基础。1.DTMUV-E蛋白单克隆抗体的制备利用DTMUV-E蛋白作免疫抗原,通过杂交瘤技术,制备出两株杂交瘤细胞A6E7和D1D7。经辛酸-硫酸铵沉淀法和亲和层析法纯化,得到两株浓度分别为0.97mg/mL和1.09mg/mL的单克隆抗体A6E7和D1D7。亚类分析表明,两株单克隆抗体重链类型均为IgG1,轻链类型均为κ。间接IFA和WB试验分析显示,A6E7和D1D7均能特异性识别DTMUV,与GPV、DPV和DHAV-1均无交叉反应。通过分析单克隆抗体识别的抗原表位情况,结果表明A6E7和D1D7识别同一抗原表位。进一步分析单克隆抗体对E蛋白的相对亲和力,发现A6E7相对亲和力要大于D1D7,其能与E蛋白更好的反应。2.DTMUV-E蛋白抗体检测试剂盒的研究将单克隆抗体A6E7进行辣根过氧化物酶标记,制备出酶标单抗。进而包被E蛋白,建立了直接阻断ELISA方法。通过优化试验条件,结果表明E蛋白最适包被浓度为3.75μg/mL,血清和酶标单抗最佳稀释度分别为1:2和1:400,抗原最佳包被时间37℃2h,最佳封闭时间37℃1h,血清和酶标单抗最佳温育时间均为37℃1h,最佳显色时间10min。在此基础上,对试剂盒组分进行处理,制备并组装出试剂盒。特异性试验表明,对DHAV-1、DHAV-3、DPV、RA、DuCV阳性血清均无交叉反应发生。通过检测60份已知背景的鸭血清样品,该试剂盒检测准确率100%,其敏感性良好。重复性试验和稳定性试验分析表明,该试剂盒重复性好,能在4℃条件下稳定保存7个月。检测324份临床鸭血清样品,并与已报道的间接ELISA方法进行对比,结果表明试剂盒检测的阴性结果符合率为94.96%,阳性结果符合率为75.76%,比较两种方法符合率为91.05%。

论文目录

  • 中文摘要
  • ABSTRACT
  • 缩略词表
  • 第一部分 文献综述
  •   1 鸭坦布苏病毒E蛋白的研究进展
  •     1.1 E蛋白结构特点
  •       1.1.1 E蛋白的调控中枢
  •       1.1.2 DⅡ和DⅢ的反抑制作用
  •     1.2 E蛋白的功能
  •       1.2.1 介导病毒感染宿主细胞
  •       1.2.2 诱导宿主产生中和抗体
  •       1.2.3 诱发程序性细胞死亡
  •     1.3 应用
  •       1.3.1 疾病检测
  •       1.3.2 疫苗
  •   2 酶联免疫吸附测定法概述
  •     2.1 分类
  •     2.2 技术特点
  •     2.3 在DTMUV检测上的应用
  •   3 研究目的和意义
  • 第二部分 试验研究
  •   第一章 鸭坦布苏病毒E蛋白单克隆抗体的制备
  •     1 材料
  •       1.1 病毒
  •       1.2 免疫蛋白和实验动物
  •       1.3 主要仪器
  •       1.4 主要试剂
  •       1.5 溶液配制
  •     2 方法
  •       2.1 动物免疫
  •       2.2 间接ELISA方法的建立
  •       2.3 杂交瘤细胞的制备
  •     2.3.1 细胞融合
  •     2.3.2 阳性杂交瘤细胞的筛选
  •     2.3.3 杂交瘤细胞的亚克隆
  •     2.3.4 杂交瘤细胞的扩大培养
  •     2.3.5 杂交瘤细胞的冻存
  •     2.3.6 杂交瘤细胞的复苏
  •       2.4 单克隆抗体的制备
  •     2.4.1 体外培养法
  •     2.4.2 体内培养法
  •     2.4.3 腹水的纯化
  •       2.6 单克隆抗体的鉴定
  •     2.6.1 单抗亚类鉴定
  •     2.6.2 间接IFA试验
  •     2.6.3 单抗特异性鉴定
  •     2.6.4 相加ELISA鉴定
  •     2.6.5 单抗相对亲和力的测定
  •     3 结果
  •       3.1 间接ELISA方法的建立
  •       3.2 杂交瘤细胞的筛选
  •       3.3 杂交瘤细胞株稳定性鉴定
  •       3.4 抗体效价测定
  •       3.5 单克隆抗体的纯化
  •       3.6 单克隆抗体的鉴定
  •     3.6.1 单抗亚型鉴定
  •     3.6.2 间接IFA鉴定
  •     3.6.3 单抗特异性鉴定
  •     3.6.4 相加ELISA鉴定
  •     3.6.5 相对亲和力的测定
  •     4 讨论
  •     5 小结
  •   第二章 DTMUV抗体检测试剂盒的研制
  •     1 材料
  •       1.1 血清
  •       1.2 主要仪器
  •       1.3 主要试剂
  •       1.4 溶液配制
  •     2 方法
  •       2.1 标准血清的制备
  •       2.2 酶标抗体的制备
  •       2.3 直接阻断ELISA方法的建立和优化
  •     2.3.1 最佳抗原包被浓度和酶标单抗工作浓度的确定
  •     2.3.2 最佳血清稀释度的确定
  •     2.3.3 最佳包被时间的确定
  •     2.3.4 BSA浓度及封闭时间的确定
  •     2.3.5 温育时间的确定
  •     2.3.6 显色时间的确定
  •       2.4 试剂盒各组分的制备
  •     2.4.1 抗原包被板
  •     2.4.2 酶标抗体工作液
  •     2.4.3 标准血清
  •     2.4.4 样品稀释/洗涤液
  •     2.4.5 显色液
  •     2.4.6 终止液
  •       2.5 试剂盒的组装和质量检测
  •     2.5.1 试剂盒的组装
  •     2.5.2 试剂盒的临界值
  •     2.5.3 重复性试验
  •     2.5.4 特异性试验
  •     2.5.5 敏感性试验
  •     2.5.6 稳定性试验
  •     2.5.7 临床样品检测
  •     3 结果
  •       3.1 阳性血清效价检测
  •       3.2 酶标抗体的制备
  •       3.3 直接阻断ELISA方法的优化
  •     3.3.1 最佳抗原包被浓度和HRP-MAb工作浓度的确定
  •     3.3.2 最佳血清稀释度的确定
  •     3.3.3 E蛋白包被时间的确定
  •     3.3.4 BSA浓度及封闭时间的确定
  •     3.3.5 温育时间的确定
  •     3.3.6 显色时间的确定
  •       3.4 试剂盒各组分的检验
  •     3.4.1 无菌检验
  •     3.4.2 抗原包被板的检验
  •     3.4.3 酶标抗体工作液的检验
  •     3.4.4 标准血清的检验
  •       3.5 试剂盒的组装
  •       3.6 试剂盒临界值的确定
  •       3.7 试剂盒的鉴定
  •     3.7.1 重复性鉴定
  •     3.7.2 特异性鉴定
  •     3.7.3 敏感性鉴定
  •     3.7.4 稳定性鉴定
  •     3.7.5 临床样品检测
  •     4 讨论
  •     5 小结
  • 结论
  • 参考文献
  • 致谢
  • 作者简历
  • 文章来源

    类型: 硕士论文

    作者: 邓杰

    导师: 贾仁勇,方鹏飞

    关键词: 鸭坦布苏病毒,蛋白,单克隆抗体,直接阻断,试剂盒

    来源: 四川农业大学

    年度: 2019

    分类: 基础科学,农业科技

    专业: 生物学,畜牧与动物医学

    单位: 四川农业大学

    分类号: S852.65

    DOI: 10.27345/d.cnki.gsnyu.2019.000615

    总页数: 64

    文件大小: 2371k

    下载量: 22

    相关论文文献

    • [1].鸭坦布苏病毒的研究进展[J]. 家禽科学 2019(04)
    • [2].鸭坦布苏病毒诱导细胞自噬并促进病毒复制的初步研究[J]. 中国兽医科学 2016(06)
    • [3].鸭坦布苏病毒囊膜E蛋白的原核表达[J]. 福建农业学报 2014(10)
    • [4].一例鸭坦布苏病毒与大肠杆菌混合感染的诊断[J]. 福建畜牧兽医 2012(01)
    • [5].鸭坦布苏病毒包膜蛋白的原核表达和间接ELISA抗体检测方法的建立[J]. 动物医学进展 2012(12)
    • [6].鸭坦布苏病毒分子生物学诊断技术研究进展[J]. 甘肃畜牧兽医 2015(09)
    • [7].抗鸭坦布苏病毒E蛋白单克隆抗体的制备及鉴定[J]. 中国兽医科学 2014(08)
    • [8].一株鸭坦布苏病毒的分离与鉴定[J]. 中国动物保健 2018(07)
    • [9].鸭坦布苏病毒对雏鸭免疫系统的影响[J]. 中国兽医学报 2017(02)
    • [10].鸭坦布苏病毒E蛋白的原核表达及多克隆抗体的制备[J]. 中国微生态学杂志 2016(02)
    • [11].鸭坦布苏病毒抗体间接ELISA检测方法的建立[J]. 中国预防兽医学报 2011(08)
    • [12].鸭坦布苏病毒E蛋白原核表达及其免疫原性研究[J]. 动物医学进展 2014(02)
    • [13].鸭坦布苏病毒LH株E蛋白基因的克隆与结构[J]. 福建农林大学学报(自然科学版) 2016(02)
    • [14].检测鸭坦布苏病毒乳胶凝集试验的建立及初步应用[J]. 福建农业学报 2014(04)
    • [15].4株鸭坦布苏病毒包膜蛋白基因的分子进化分析及表达[J]. 中国兽医学报 2013(02)
    • [16].鸭坦布苏病毒E蛋白单克隆抗体的制备及鉴定[J]. 畜牧与兽医 2013(10)
    • [17].不同日龄雏鸭感染鸭坦布苏病毒后血清中免疫球蛋白及细胞因子的动态变化[J]. 中国预防兽医学报 2016(02)
    • [18].鸭坦布苏病毒E基因主要抗原域的原核表达及单克隆抗体的制备[J]. 中国预防兽医学报 2016(06)
    • [19].鸭混合感染病例中鸭坦布苏病毒的分离鉴定与E基因序列分析[J]. 中国兽医学报 2015(04)
    • [20].表达鸭坦布苏病毒E蛋白的重组鸭瘟病毒的构建及其生物学特性[J]. 浙江农业学报 2015(11)
    • [21].鸭坦布苏病毒抗体间接ELISA检测方法的建立和应用[J]. 浙江畜牧兽医 2014(05)
    • [22].抗鸭坦布苏病毒卵黄抗体的制备及检测[J]. 养禽与禽病防治 2014(01)
    • [23].鸭坦布苏病毒研究进展[J]. 中国动物传染病学报 2013(01)
    • [24].鸭坦布苏病毒实时荧光定量RT-PCR检测方法的建立及应用[J]. 中国动物传染病学报 2013(04)
    • [25].抗鸭坦布苏病毒卵黄抗体的制备[J]. 养禽与禽病防治 2017(11)
    • [26].鸭坦布苏病毒对雏鸭血清生化指标、细胞因子和病毒复制情况的影响(英文)[J]. Agricultural Science & Technology 2017(08)
    • [27].鸭坦布苏病毒琼脂扩散试验方法的建立[J]. 中国家禽 2014(24)
    • [28].鸭坦布苏病毒E蛋白的原核表达[J]. 中国动物传染病学报 2012(02)
    • [29].鸭坦布苏病毒GX150829株的分离鉴定与E基因的序列分析[J]. 中国家禽 2016(07)
    • [30].坦布苏病毒NS1蛋白的表达及ELISA检测方法的建立[J]. 畜牧兽医学报 2016(05)

    标签:;  ;  ;  ;  ;  

    鸭坦布苏病毒E蛋白单克隆抗体的制备及其ELISA试剂盒的研制
    下载Doc文档

    猜你喜欢