Nyap1在小鼠大脑皮层发育中的作用及机制研究

Nyap1在小鼠大脑皮层发育中的作用及机制研究

论文摘要

哺乳动物大脑皮质经过正常发育最终会形成致密的六层结构,该结构对大脑皮质行使正常的生理功能十分重要。大脑皮质发育异常可能导致:癫痫,认知功能障碍,小脑症和巨脑症等重大神经系统疾病发生的可能。大脑皮质的发育需要经过神经祖细胞增殖,神经元迁移,分化,建立突触联系等多项步骤协调进行。其中,神经元迁移是大脑皮层六层结构形成的基础,新出生的神经元越过原来产生的神经元到达皮质外层,依次形成“由内而外”的层状结构。PI3-激酶神经元酪氨酸磷酸化接头蛋白1(neuronal tYrosine-phosphorylated adaptor for PI3-kinase 1,Nyap1)是NYAP家族(NYAPs)中的一员,该家族还包括Nyap2和Nyap3。NYAPs有一段同源区域具有保守的酪氨酸残基和一段脯氨酸富集区域。NYAPs是大脑中主要的磷蛋白,在与PI3K相关的酪氨酸磷酸化作用中,NYAPs占据其中的四分之三。NYAPs在小鼠大脑皮质中高度表达,并且NYAPs还介导细胞中actin细胞骨架重塑。敲除NYAPs会使神经元突起生长不足,大脑皮质变薄,其中Nyap1的敲除表现得最为明显。Nyap1在整个大脑皮质中都有表达,且从E10开始在围产期前后达到峰值,表明Nyap1在皮质发育中起到重要作用,但对于Nyap1在神经元迁移中的研究还鲜有报道。本研究以小鼠大脑皮质为研究对象,通过构建Nyap1的超表达载体(Nyap1),干扰载体(shNyap1),酪氨酸点突变载体(Nyap1Y212F、Nyap1Y257F和Nyap1Y212/257F),运用子宫内电击转染、细胞转染、Western Blot、免疫荧光染色和激光共聚焦拍照等方法,研究分析Nyap1在神经元迁移过程中作用及其机制。此外,通过构建Fyn的干扰载体(shFyn)、酪氨酸激活载体(Fyn-CA)研究Nyap1与Fyn在神经元迁移过程中二者之间的分子机制。主要结果包括:1.成功克隆Nyap1基因片段并构建Nyap1的超表达载体,运用细胞转染技术转染3T3细胞,确定超表达载体成功表达;利用子宫内电击转染技术,标记神经细胞,发现Nyap1促进神经元突起伸长和突起分支,通过在不同时间点取材,确定Nyap1促进神经元从中间带(intermediate zone,IZ)向皮质板(cortical plate,CP)的迁移。2.成功构建Nyap1的干扰载体,对NIH3T3细胞转染验证,确定质粒成功表达;使用HEK293T细胞转染,Western Blot检测干扰效率;子宫内电击转染shNyap1质粒,观察到神经元迁移受到抑制。主要表现在大部分神经元聚集于IZ(中间带)区,并保持多极形态,多极向双极转换受到抑制。3.利用定点突变技术,成功构建Nyap1的酪氨酸点突变载体(Nyap1Y212F、Nyap1Y257F和Nyap1Y212/257F),使用3T3细胞转染质粒,确定质粒成功表达;子宫内电击转染Nyap1Y212F和Nyap1Y257F发现,神经元促进迁移的水平减弱,介于Nyap1和GFP之间;神经元的形态基本恢复正常;转染Nyap1Y212/257F后,神经元迁移受到抑制,在E18.5天,大量神经元仍停留在IZ(中间带)区;CP(皮质板)区神经元形态基本恢复正常,IZ-CP(中间带-皮质板)边界有的神经元出现了两个突起,说明Nyap1酪氨酸磷酸化缺失影响神经元正常迁移和形态。4.通过共转shFyn和Nyap1,发现神经元迁移障碍得到挽救;共转Fyn-CA和shNyap1并不能挽救神经元迁移障碍;共转shFyn和Nyap1Y212/257F并不能完全挽救神经元迁移障碍。以上结果说明,Nyap1是Fyn的下游分子之一,Fyn可以通过磷酸化Nyap1发挥作用。综上所述,Nyap1的酪氨酸磷酸化作用是调控神经元迁移的关键,并且Fyn可以通过磷酸化Nyap1调控神经元迁移。

论文目录

  • 摘要
  • ABSTRACT
  • 第一章 小鼠大脑皮质结构及神经元迁移
  •   1.1 小鼠大脑皮层结构
  •   1.2 神经元迁移概述
  •     1.2.1 神经元迁移种类及过程
  •     1.2.2 神经元多极-双极转换
  •   1.3 细胞骨架与神经元迁移
  •   1.4 神经元迁移相关信号通路
  • 第二章 NYAP结构及功能
  •   2.1 NYAPs的结构与表达模式
  •   2.2 NYAP介导的信号通路
  •   2.3 NYAP介导Actin细胞骨架重塑
  •   2.4 NYAP与脑部发育
  • 第三章 过表达Nyap1 对神经元形态及迁移的影响
  •   3.1 材料与方法
  •     3.1.1 实验动物
  •     3.1.2 材料与试剂
  •     3.1.3 Nyap1 表达载体的构建
  •     3.1.4 细胞培养及转染
  •     3.1.5 细胞免疫荧光染色及拍照分析
  •     3.1.6 子宫内电击转染
  •     3.1.7 组织取材与切片制备
  •     3.1.8 组织免疫荧光染色及显微镜拍照
  •     3.1.9 统计分析
  •   3.2 结果
  •     3.2.1 pCAG-Nyap1-EGFP真核表达载体的构建
  •     3.2.2 Nyap1 在真核细胞中成功表达
  •     3.2.3 Nyap1 对神经元形态的影响
  •     3.2.4 Nyap1 对神经元迁移的影响
  •   3.3 讨论
  •   3.4 小结
  • 第四章 干扰Nyap1 对神经元形态及迁移的影响
  •   4.1 材料与方法
  •     4.1.1 实验动物
  •     4.1.2 材料与试剂
  •     4.1.3 Nyap1 干扰载体构建
  •     4.1.4 Nyap1-R表达载体构建
  •     4.1.5 细胞培养及转染
  •     4.1.6 细胞免疫荧光染色及拍照分析
  •     4.1.7 蛋白样品提取
  •     4.1.8 Western Blot
  •     4.1.9 子宫内电击转染
  •     4.1.10 组织取材与切片制备
  •     4.1.11 组织免疫荧光染色及显微镜拍照
  •     4.1.12 统计分析
  •   4.2 结果
  •     4.2.1 表达载体的构建
  •     4.2.2 干扰表达载体在真核细胞中的表达
  •     4.2.3 shNyap1 敲降效果检测
  •     4.2.4 抑制Nyap1 对神经元迁移的影响
  •     4.2.5 抑制Nyap1 对神经元形态的影响
  •   4.3 讨论
  •   4.4 小结
  • 第五章 Nyap1 磷酸化水平对神经元形态及迁移的影响
  •   5.1 材料与方法
  •     5.1.1 实验动物
  •     5.1.2 材料与试剂
  •     5.1.3 Nyap1 突变表达载体的构建
  •     5.1.4 细胞培养及转染
  •     5.1.5 细胞免疫荧光染色及拍照分析
  •     5.1.6 子宫内电击转染
  •     5.1.7 组织取材与切片制备
  •     5.1.8 组织免疫荧光染色及显微镜拍照
  •     5.1.9 统计分析
  •   5.2 结果
  •     5.2.1 Nyap1 磷酸化突变体真核表达载体的构建
  •     5.2.2 Nyap1 磷酸化突变载体在真核细胞中成功表达
  •     5.2.3 Nyap1 磷酸化位点突变对神经元迁移的影响
  •     5.2.4 Nyap1 磷酸化位点突变对神经元形态的影响
  •     5.2.5 Nyap1 磷酸化完全缺失对神经元迁移的影响
  •     5.2.6 Nyap1 磷酸化完全缺失对神经元形态的影响
  •   5.3 讨论
  •   5.4 小结
  • 第六章 Fyn磷酸化Nyap1 调控神经元迁移
  •   6.1 材料与方法
  •     6.1.1 实验动物
  •     6.1.2 材料与试剂
  •     6.1.3 真核表达载体构建
  •     6.1.4 子宫内电击转染
  •     6.1.5 组织取材与切片制备
  •     6.1.6 组织免疫荧光染色及显微镜拍照
  •     6.1.7 统计分析
  •   6.2 结果
  •     6.2.1 超表达Nyap1 挽救shFyn导致的多极-双极转换障碍
  •     6.2.2 shNyap1 无法完全挽救Fyn-CA引起的神经元迁移障碍
  •     6.2.3 Nyap1 磷酸化缺失无法挽救shFyn导致的多极-双极转换障碍
  •   6.3 讨论
  •   6.4 小结
  • 第七章 结论
  • 参考文献
  • 致谢
  • 个人简历
  • 文章来源

    类型: 硕士论文

    作者: 王树中

    导师: 赵善廷,朱晓岩

    关键词: 酪氨酸磷酸化,神经元迁移

    来源: 西北农林科技大学

    年度: 2019

    分类: 基础科学

    专业: 生物学

    单位: 西北农林科技大学

    基金: 国家自然基金面上项目(编号:31572477)

    分类号: Q42

    总页数: 87

    文件大小: 5434K

    下载量: 64

    相关论文文献

    • [1].伊马替尼对慢性髓性白血病酪氨酸磷酸化的影响[J]. 中国医刊 2016(06)
    • [2].去甲肾上腺素及血管紧张素Ⅱ对大鼠心肌细胞胰岛素受体及胰岛素受体底物1酪氨酸磷酸化的综合效应[J]. 蚌埠医学院学报 2018(02)
    • [3].钙离子结合酪氨酸磷酸化调解基因的特征及在肿瘤发病中的意义[J]. 中国普外基础与临床杂志 2012(06)
    • [4].中国科大等实现蛋白质酪氨酸磷酸化的定性和定量检测[J]. 生命的化学 2013(02)
    • [5].罗格列酮对多囊卵巢综合征患者卵巢黄素化颗粒细胞胰岛素受体底物1和2蛋白表达及酪氨酸磷酸化的影响[J]. 中国病理生理杂志 2008(08)
    • [6].酪氨酸磷酸化在精子获能过程中的作用[J]. 中国畜牧兽医 2018(09)
    • [7].RON变异体RONΔ170对自身酪氨酸磷酸化变异体RONΔ160的显性抑制作用[J]. 全科医学临床与教育 2009(05)
    • [8].高转移肝癌细胞HCCLM6的酪氨酸磷酸化蛋白质组学研究[J]. 军事医学 2019(02)
    • [9].双底物特异性酪氨酸磷酸化调节激酶A(DYRK1A)的研究进展[J]. 现代肿瘤医学 2015(15)
    • [10].酪氨酸磷酸酶Shp-1通过抑制TRPV1限制大鼠炎症痛的发展[J]. 中国疼痛医学杂志 2015(09)
    • [11].白藜芦醇对人舌鳞状细胞癌系(Tca8113)缝隙连接蛋白43蛋白质表达和酪氨酸磷酸化的影响[J]. 临床口腔医学杂志 2018(12)
    • [12].KIT调节肥大细胞性白血病细胞中β-catenin的酪氨酸磷酸化及核内定位[J]. 现代泌尿外科杂志 2008(03)
    • [13].人IL-5诱导的STAT3酪氨酸磷酸化[J]. 中国实验诊断学 2009(10)
    • [14].不同获能方法对冻融塔里木马鹿精子体外获能及其蛋白酪氨酸磷酸化的影响[J]. 新疆农业大学学报 2013(05)
    • [15].多囊卵巢综合征痰湿证患者IRS-1蛋白表达及酪氨酸磷酸化研究[J]. 山东中医杂志 2015(06)
    • [16].蛋白酪氨酸磷酸酶H型受体的生物学功能及其在肿瘤中的研究进展[J]. 中南大学学报(医学版) 2020(01)
    • [17].NAC抑制镉离子诱导的小鼠精子DLD酪氨酸磷酸化作用[J]. 上海交通大学学报(农业科学版) 2019(02)
    • [18].多囊卵巢综合征患者子宫内膜胰岛素受体底物的表达[J]. 河北医科大学学报 2014(07)
    • [19].启宫丸对PCOS痰湿证患者IRS-2蛋白表达及酪氨酸磷酸化的影响[J]. 山东中医杂志 2015(02)
    • [20].病毒上清液促进体外培养INS-1细胞系胰岛素分泌[J]. 基础医学与临床 2013(06)
    • [21].HCV蛋白NS5A对PI3K/Akt通路的分子调节作用[J]. 现代消化及介入诊疗 2012(01)
    • [22].胰岛、肝细胞水平胰岛素抵抗与系统胰岛素抵抗关系的研究[J]. 新疆医科大学学报 2011(01)
    • [23].胰岛素抵抗大鼠的肝脏中丝氨酸/酪氨酸磷酸化异常与血清TNF-α相关[J]. 中国实验动物学报 2009(05)
    • [24].Lck/Hck/Fgr介导的TBK1酪氨酸磷酸化负调TBK1功能及抗病毒天然免疫应答[J]. 科学新闻 2018(04)
    • [25].猪精子获能期间蛋白质磷酸化时间依赖性的上调[J]. 江西农业大学学报 2010(03)
    • [26].镉对小鼠精子蛋白酪氨酸磷酸化修饰的影响及EGTA的保护作用[J]. 应用生态学报 2016(12)
    • [27].冷冻处理对猪精子蛋白酪氨酸磷酸化水平的影响[J]. 黑龙江畜牧兽医 2011(21)
    • [28].胆管细胞癌酪氨酸激酶激活及其磷酸化酶分布[J]. 外科理论与实践 2011(06)
    • [29].针刺干预大鼠胰岛素抵抗及下丘脑胰岛素受体后IRS1及其酪氨酸磷酸化的研究[J]. 中医药信息 2013(01)
    • [30].酪氨酸的磷酸化及去磷酸化对心脏钾离子通道的调控[J]. 中国分子心脏病学杂志 2011(03)

    标签:;  ;  

    Nyap1在小鼠大脑皮层发育中的作用及机制研究
    下载Doc文档

    猜你喜欢