深海嗜热菌Caloranaerobacter azorensis H53214 [FeFe]-氢酶基因异源共表达及产氢分析

深海嗜热菌Caloranaerobacter azorensis H53214 [FeFe]-氢酶基因异源共表达及产氢分析

论文摘要

目前,经济的迅速发展导致二氧化碳排放增加,随之而来的是全球气温飙升,海洋环境日益恶化,导致人类生存受到威胁。减少碳排放量,减少化石燃料的利用,寻找无污染的新型能源势在必行。氢气作为清洁、高质量能比、高能量产值的能源备受关注。生物制氢具有原料来源广泛,耗能少,成本低等优点,是最近研究的热点之一。本实验将来源于Caloranaerobacter azorensis H 53214的一种新型[FeFe]-氢酶结构基因hyd A2及其3个成熟蛋白基因(hydE,hydF,hyd G)以共表达方式插入到含有的[NiFe]-氢酶的Koxytoca HP1中,构建了新的重组菌株HPl-Hyd。利用IPTG诱导四个蛋白表达,在厌氧条件下,成熟蛋白Hyd E、Hyd F、Hyd G能催化激活Hyd A2蛋白成为有活性的[FeFe]-氢酶。在[NiFe]-氢酶和[FeFe]-氢酶两种氢酶的共同催化,1 mL菌液利用葡萄糖暗发酵产氢总量提高了26%,最大产氢速率相较于野生型菌株118.3 mL/L/h,增长到了 145.8 mL/L/h。相较于野生型菌株酶活0.79 U,其酶活达到了1.71 U。对其氢酶理化性质进行研究,结果表明在60℃,pH为7.5,完全厌氧时酶活达到最高,这也与提供[FeFe]-氢酶的深海嗜热菌H53214和从温泉分离的Koxytoca HP1所处环境相符。以前的研究表明Koxytoca HP1在暗发酵产氢过程中,主要是通过甲酸裂解方式产氢。本研究通过实时荧光定量PCR分析得出重组菌株中影响甲酸裂解途径催化效率的[NiFe]-氢酶大小亚基表达量降低,对比分析了重组菌株利用甲酸为底物的发酵产氢能力。结果表明,与野生型K.oxytoca HP1产氢效率为86.35 mL/L/h相比,重组菌株甲酸钠发酵产氢能力产氢效率为68.53 mL/L/h。虽有所降低,但仍然保持较高活性。通过对葡萄糖发酵过程中代谢途径分析发现,与野生菌相比,重组菌株产氢发酵液中2,3-丁二醇含量减少0.0201 mol/mol Glu,乙醇含量减少0.0414 mol/mol Glu,乳酸含量减少0.0226 mol/mol Glu,代谢支路总NADH减少,说明利用NADH产氢能力增强。本论文实验结果证明了外源深海[FeFe]-氢酶的表达可改变K.oxytoca HPl产氢途径并提高产氢效率,为产氢微生物的改造提供了新的思路。

论文目录

  • 英文缩略语表
  • 摘要
  • Abstract
  • 1 前言
  •   1.1 氢能源重要性
  •   1.2 生物制氢
  •     1.2.1 水的生物光解
  •     1.2.2 光致发酵
  •     1.2.3 暗发酵产氢
  •   1.3 氢酶结构及催化机理
  •     1.3.1 氢酶的结构
  •       1.3.1.1 [NiFe]-氢酶
  •       1.3.1.2 [FeFe]-氢酶的结构
  •       1.3.1.3 [Fe]-氢酶的结构
  •     1.3.2 氢酶的催化机理
  •   1.4 氢酶的成熟及表达调控
  •     1.4.1 [FeFe]-氢酶的成熟及表达调控
  •     1.4.2 [NiFe]-氢酶的成熟及表达调控
  •   1.5 氢酶的应用
  •   1.6 本文研究的主要内容和意义
  • 2 材料与仪器
  •   2.1 材料
  •     2.1.1 菌种和质粒
  •     2.1.2 引物
  •     2.1.3 培养基的配制
  •     2.1.4 菌体的培养
  •       2.1.4.1 K.oxytocaHP1菌种、E.coli DH5α菌种的培养
  •     2.1.5 常用药品及仪器
  •     2.1.6 实验试剂的配置
  • 3 实验方法
  •   3.1 分子克隆相关实验
  • 2与成熟蛋白Hyd E、Hyd F、Hyd G共表达策'>    3.1.1 Hyd A2与成熟蛋白Hyd E、Hyd F、Hyd G共表达策
  •     3.1.2 C.azorensis H53214总DNA的提取
  •     3.1.3 大肠杆菌/克雷伯氏菌感受态细胞的制备
  •     3.1.4 质粒DNA小提
  •     3.1.5 DNA样品琼脂糖凝胶电泳
  •     3.1.6 琼脂糖回收DNA片段
  • 2重叠PCR扩增'>    3.1.7 GST-hydA2重叠PCR扩增
  •     3.1.8 hydE,F,G基因PCR扩增
  •     3.1.9 质粒DNA转化
  •     3.1.10 构建单基因原核表达质粒
  •     3.1.11 构建双基因原核表达质粒
  •     3.1.12 构建原核共表达菌株
  •   3.2 基因诱导表达验证与纯化
  •     3.2.1 IPTG诱导目的蛋白的表达
  •     3.2.2 实时荧光定量PCR检测验证
  •       3.2.2.1 总RNA的提取
  •       3.2.2.2 RNA质量检测
  •       3.2.2.3 反转录
  •       3.2.2.4 qPCR
  •     3.2.3 Western Blot检测
  •     3.2.4 可溶性目的蛋白的制备
  •       3.2.4.1 菌体蛋白的获取
  •       3.2.4.2 GST磁珠纯化蛋白
  •       3.2.4.3 SDS-PAGE检测蛋白
  •   3.3 重组菌株产氢能力测定
  •     3.3.1 生长曲线的测定
  •     3.3.2 产氢能力的测定
  •     3.3.3 发酵底物葡萄糖的测定
  •       3.3.3.1 葡萄糖标准曲线的制定
  •       3.3.3.2 样品的测定
  •   3.4 氢酶理化性质研究
  •     3.4.1 粗酶液的提取
  •     3.4.2 蛋白浓度测定
  •       3.4.2.1 蛋白浓度标准曲线的制定
  •       3.4.2.2 样品的测定
  •     3.4.3 氢酶酶活检测
  •     3.4.4 温度对HP1-Hyd氢酶酶活影响
  •     3.4.5 pH对HP1-Hyd氢酶酶活影响
  •     3.4.6 氢酶耐氧性研究
  •   3.5 甲酸产氢途径的研究
  •   3.6 代谢产物的测定
  • 4 实验结果
  •   4.1 原核表达载体的构建
  • 2基因的克隆'>    4.1.1 GST-hyd A2基因的克隆
  •     4.1.2 [FeFe]-氢酶成熟蛋白基因的克隆
  •     4.1.3 hyd F/pETDuet-1重组载体的构建
  •     4.1.4 hyd G/pCDFDuet-1重组载体的构建
  • 2/F-pETDuet-1重组质粒'>    4.1.5 构建GST-hyd A2/F-pETDuet-1重组质粒
  •     4.1.6 构建hyd E/hyd G-pCDFDuet-1重组质粒
  •     4.1.7 原核共表达菌株HP1-Hyd-1的构建
  •   4.2 重组菌株HP1-Hyd的构建
  •   4.3 重组菌株HP1-Hyd的表达和纯化
  •     4.3.1 重组菌株HP1-Hyd的SDS-PAGE凝胶电泳分析
  •     4.3.2 实时荧光定量PCR分析
  •       4.3.2.1 [FeFe]-氢酶基因实时荧光定量PCR分析
  •       4.3.2.2 [NiFe]-氢酶大小亚基实时荧光定量PCR分析
  •     4.3.3 Western Blot分析
  •     4.3.4 可溶性目的蛋白的制备
  •   4.4 重组菌株产氢能力分析
  •     4.4.1 生长曲线的分析
  •     4.4.2 产氢能力的分析
  •     4.4.3 发酵产物葡萄糖的分析
  •       4.4.3.1 葡萄糖标准曲线
  •       4.4.3.2 发酵底物中葡萄糖的分析
  •   4.5 重组氢酶活性分析
  •     4.5.1 蛋白浓度标准曲线
  •     4.5.2 氢酶酶活分析
  •     4.5.3 温度对重组菌株HP1-Hyd氢酶酶活影响
  •     4.5.4 pH对重组菌株HP1-Hyd氢酶酶活影响
  •     4.5.5 氢酶耐氧性研究
  •   4.6 甲酸产氢途径的分析
  •   4.7 代谢产物的分析
  • 5 实验讨论
  •   5.1 [FeFe]-氢酶基因的克隆和共表达载体的构建
  •   5.2 [FeFe]-氢酶蛋白的表达
  •   5.3 HP1-Hyd菌株产氢分析
  •   5.4 HP1-Hyd菌株酶活理化性质分析
  •   5.5 HP1-Hyd菌株代谢产物分析
  • 6 结论与展望
  •   6.1 实验结论
  •   6.2 实验展望
  • 附录
  • 参考文献
  • 致谢
  • 文章来源

    类型: 硕士论文

    作者: 李馨培

    导师: 邬小兵

    关键词: 氢酶,代谢产物

    来源: 厦门大学

    年度: 2019

    分类: 基础科学

    专业: 生物学

    单位: 厦门大学

    分类号: Q939.9

    总页数: 101

    文件大小: 6501K

    下载量: 8

    相关论文文献

    • [1].异源表达【FeFe】氢酶的基因工程大肠杆菌的构建[J]. 微生物学报 2011(11)
    • [2].基于不同碱基含量的[FeFe]-氢化酶模型化合物功能化聚合物的合成与表征[J]. 无机化学学报 2015(01)
    • [3].基于[FeFe]-氢化酶模型化合物的聚合材料的合成及其催化性能[J]. 合成化学 2015(06)
    • [4].含单蝶状[2Fe2S]骨架的新型[FeFe]氢化酶模型物{(μ-FcS)(μ-SMe)Fe_2(CO)_6}的合成及其晶体结构[J]. 合成化学 2011(06)
    • [5].含双蝶状[2Fe2S]骨架的新型[FeFe]氢化酶模型物{(μ-FcS_2)[Fe_2(CO)_6]_2(μ-SMe)_2}的合成及其晶体结构[J]. 合成化学 2012(01)

    标签:;  ;  

    深海嗜热菌Caloranaerobacter azorensis H53214 [FeFe]-氢酶基因异源共表达及产氢分析
    下载Doc文档

    猜你喜欢