一、十字花科作物根肿病药效试验初报（论文文献综述）
王神云[1]（2021）在《甘蓝抗根肿病种质资源鉴定及抗性相关基因挖掘》文中认为结球甘蓝（Brassica oleracea var.capitata L.,简称甘蓝）属十字花科芸薹属甘蓝变种,是我国栽培的主要叶菜类蔬菜之一,在蔬菜供应和进出口中占有重要的地位。由芸薹根肿菌（Plasmodiophora brassicae Woronin）引起的甘蓝根肿病在世界范围肆虐,严重危害甘蓝等十字花科蔬菜的生产,造成产量和质量大幅降低。然而,由于抗病资源相对匮乏及病原菌生理小种复杂等原因,使得抗病研究和品种选育进展缓慢。本研究在采集我国甘蓝根肿病重病区的芸薹根肿菌和鉴定其生理小种的基础上,鉴定和筛选甘蓝抗根肿病资源,利用抗、感病材料接种后表达谱的差异、全基因组鉴定和过表达分析,挖掘抗性相关基因。主要研究结果如下:（1）采集湖北省利川市汪营镇和宜昌市火烧坪乡根肿病病发严重区域的病土和病根,分离病原菌,通过显微观察其形态特征,根据芸薹根肿菌ITS序列设计引物对其进行PCR鉴定,确定病原菌为芸薹根肿菌。筛选出Plasmo3-4特异引物可以直接快速的用于甘蓝、白菜、油菜等其他十字花科作物根肿病病原菌检测。随后利用欧洲根肿病鉴别系统（European clubroot differential set,ECD）结合苗期菌土接种法确定了这两个地区根肿菌的生理小种:汪营镇的病原菌为ECD16/4/0,火烧坪乡的病原菌为ECD17/31/13,前者致病力一般,后者致病力极强。因此,以致病力强的火烧坪芸薹根肿菌为接种源,采用苗期菌土人工接种鉴定与成株期自然诱发鉴定相结合的方法,对88份甘蓝种质资源进行抗性鉴定和筛选,大部分材料在两个时期的抗性表现相对一致,其中CR21两个时期的抗性表现均最强,CR55和CR54分别在苗期和成株期表现最弱。（2）利用已鉴定出的甘蓝抗病和感病高代自交系材料CR21和CR54,在室内幼苗水培接种芸薹根肿菌,采集根部通过显微镜检查,发现根肿菌在根毛附着和穿透主要发生在侵染后3天（3 DAI）,是RNA-Seq取样的时间。根部组织进行转录组测序分析后发现,在CR21和CR54中分别找到了1,057个和4,741个差异表达基因（Differentially expressed genes,DEGs）。在CR21中541个DEGs表达量上调,而这些基因在CR54中或没有明显变化或表达量下调,通过GO注释和功能富集分析表明,大部分DEGs参与代谢、转运、信号转导和防御反应,鉴定到165个DEGs与抗病响应相关,包括病原相关分子模式激发免疫（PAMPs-triggered immunity,PTI）相关基因和效应子激发免疫（Effector-triggered immunity,ETI）相关基因。主要有伤口反应基因（Bo3g135780）、呼吸爆发氧化酶类（RBOHB）、转录因子（WRKY28）、TIR-NBS-LRR类抗病基因（RPS4等）,病程相关基因（Pathogenesis-related,PR,Bo 7g005050）,脂质转运蛋白类（LTP1）,几丁质酶（B04g020930）;植物激素响应相关基因,乙烯信号转导（类HRE1和EIN3）、ABA信号转导（PP2C和PYL13）等;细胞壁修饰相关基因（EXP17、PME44）。综上所述,这一研究揭示了 CR21和CR54响应芸薹根肿菌早期侵染的组学差异,并确定了抗病相关候选基因。（3）全基因组共鉴定到61个脂质转运蛋白（BonsLTPs）,不均等地分布在9条染色体上,根据8个半胱氨酸残基（ECM）间残基的相似性,将其中59个归为10个类型。组织转录组分析发现除BonsLTPIX2和BonsLTPXL3外,其他59个基因在不同的组织器官中有表达,部分BonsLTPs基因在花蕾、角果、茎、叶、愈伤组织中有特异表达现象。根肿菌侵染转录组与结构分析相结合鉴定到7个BonsLTPs基因（BonsLTPI.1、BonsLTPI.5、BonsLTPI.9、BonsLTPI.10、BonsLTPI.14、BonsLTPIV.1和BonsLTPIV.6）与根肿病抗性相关,BonsLTPI.5和BonsLTPI.14在拟南芥中过表达后不同程度提高了寄主对P.brassica的抗病性,BonsLTPI.14极显着降低了寄主的发病率和病情指数,BonsLTPI.5显着降低了寄主的病情指数。通过启动子响应元件分析表明它们可能通过加强第一道抵御防线增强抗病性,或者通过细胞内信号转导途径增强抗病性或对水分或营养缺乏间接响应而增强抗病性。（4）全基因组共鉴定到40个几丁质酶（BoChiAs）,不均等地分布在7条染色体上,根据这些基因编码蛋白质序列和结构特性,划分为Ⅰ-Ⅴ五个类型,其中Ⅲ、Ⅴ类型属于家族GH18。组织转录组分析发现11个BoChiAs（类型Ⅳ成员9个）在不同的组织器官中均没有表达,BoChiAⅣ.12在叶中特异表达,16个BoChiAs基因在不同的组织器官中有表达。根肿菌侵染转录组与结构分析相结合鉴定到3个BoChiAs基因（BoChiAⅣ.6、BoChiAⅣ.14、BoChiAⅣ.22）与根肿病抗性相关,BoChiAⅣ.6和BoChiAⅣ.14在拟南芥中过表达后和几丁质寡糖处理表明两个基因一定程度提高了寄主对P.brassica的抗病性,几丁质寡糖处理极显着降低了寄主的发病率和病情指数,两个基因降低了寄主的发病率和病情指数,其中BoChiAⅣ.14极显着减轻了寄主的发病程度。通过亚细胞定位和启动子响应元件分析表明上述基因可能通过直接降解病原菌几丁质或被抗病信号诱导降解病原菌几丁质而增强寄主抗病性。本研究鉴定了目前中国甘蓝根肿病最严重区域之一的病原菌生理小种,有针对性地筛选抗性资源,通过转录组分析、BonsLTPs和BoChiAs基因家族鉴定、基因过表达和抗性鉴定研究,获得甘蓝抗根肿病相关基因,可为抗根肿病研究提供参考,还可为抗病品种的选育提供优异材料和新的思路,为根肿病防治策略制定提供理论依据。
刘烈花[2]（2021）在《影响榨菜根肿病发病的关键因子及生防菌的控病作用研究》文中指出芸薹根肿病菌（Plasmodiophora brassicae Woronin）是原生动物界中一种重要的专性寄生菌,能够引起十字花科作物根肿病。该病原菌休眠孢子具有生命力强、侵染率高、传播途径广等特点,导致其难防难治。近年来,随着我国十字花科作物产业的不断发展,根肿病的发生面积及危害程度也呈逐年增加的趋势,每年均造成十字花科类作物严重的经济损失,成为限制该产业高质量发展的重要因子。当前,根肿病的防治技术主要是抗病品种、化学药剂和农事管理等措施,但防治效果均不理想,主要原因在于影响根肿病发生的关键因子不明确,防治技术措施针对性不够。因此,本研究通过室内盆栽试验,研究不同移栽时期的榨菜对根肿病的抗病效果,比较不同移栽时期的榨菜具有的生理生化特征差异,明确榨菜移栽时期对根肿病发生的影响;通过在大田采集榨菜根肿病发病与健康的根际土壤,利用高通量测序、Biolog ECO等方法,评价不同土壤理化性质、酶活特性、微生物代谢活性、微生物结构多样性等指标的差异,明确不同榨菜根际土壤理化与微生物因子对根肿病发生的影响;最后通过育苗基质添加生防菌剂技术,研究不同生防菌剂对榨菜生长、抗病、土壤微生物的影响,进一步验证让榨菜根部优先定殖有益菌可有效防治榨菜根肿病的科学假设。本学位论文的主要研究结果如下:1榨菜移栽时期越早,根肿病发生越严重采用室内盆栽模拟不同移栽时期,榨菜种子播种0 d、5 d、10 d、20 d、30 d、35 d、40 d后分别接种芸薹根肿病菌。结果表明,移栽期与根肿病的发病率和病情指数呈负相关性,即随着植株移栽期的推迟,发病率和病情指数都降低,早期侵染是影响根肿病发生的关键。其中播种0 d接种时,其平均发病率达95.14%,其平均病情指数达46.33,播种40 d后移栽时平均发病率为30.23%,平均病情指数为11.89。对不同移栽期下榨菜植株的防御酶系进行测定,结果表明受病原菌侵染后,播种培养30 d后的榨菜植株防御酶活性要高于培养低于30 d的植株,特别是植株播种后30 d移栽,其根肿病菌侵染后显着降低了植株POD（过氧化物酶）、SOD（超氧化物歧化酶）、PPO酶（多酚氧化酶）的酶活性。芸薹根肿病菌早期侵染是关键,直播于含菌土壤中,根肿病的发病率最高,表明种子带菌或种子直播是导致根肿病发病最重要的原因。2榨菜根际土壤微生物因子对根肿病的发生影响显着采集涪陵地区长期连作,芸薹根肿病常发地发病与健康植株地块60份土壤样本,通过土壤微生物群落结构测定、土壤微生物碳源代谢活性测定,结果表明,根肿病发病土壤中土壤微生物群落对碳源的平均代谢能力（AWCD）高于健康土壤,且出现以聚合物类和酚酸类化合物这两种碳源为主要代谢底物的微生物群落的富集。最后,明确了榨菜根肿病发病和健康根际土壤微生物群落之间存在显着差异;利用随机矩阵方法建立病株和健株两组样本土壤微生物群落的分子生态网络拓扑图表明,健株根际土壤微生物群落内具有更多的连接点和边缘,且连接度更高,显示出健康根际土壤的微生物间共生互作关系更为复杂。此外,通过网络拓扑图的中介中心性筛选出健康根际土壤中具有生防作用的核心物种菌群,细菌Haliangium、Mucilaginibacter和Variovorax,真菌Fusicolla、Penicillium和Cryptococcus,它们可能在抑制榨菜根肿病中发挥着重要作用。3基质添加生防菌剂技术可富集有益微生物协同防控榨菜根肿病通过基质拌菌技术施用有益微生物菌剂,同时在移栽期根际增施拮抗菌剂优化根际微生态,其中,施用枯草芽孢杆菌XF-1菌剂对榨菜根肿病的控制效果最好,与常规育苗相比其相对防效可达37.33%。采集添加微生物菌剂后的土壤样本,通过不同处理下土壤微生物群落碳源代谢活性测定,结果表明,枯草芽孢杆菌XF-1菌剂处理下能显着提高土壤微生物群落结构的多样性和丰富度,较CK对照分别高出0.663、3.861。枯草芽孢杆菌XF-1菌剂处理下主要对β-甲基D-葡萄糖苷、2-羟苯甲酸等碳源的代谢利用能力增强。且碳水类化合物和多聚物类碳源与病情指数表现出极显着的负相关。利用16S rDNA/ITS高通量测序技术对不同处理下土壤微生物群落组成测定,结果表明,土壤施用有益微生物菌剂后,会影响土壤微生物的群落组成。特别是枯草芽孢杆菌XF-1菌剂处理后,与对照进行差异判别分析,筛选出118种细菌、28种真菌在土壤样本中显着富集的微生物群落,且细菌属（Haliangium）和真菌属（Fusicolla）在健康土壤微生物的网络共生关系中也发挥着重要作用,其中筛选出5个细菌属（Edaphobaculum、Aquisphaera、Singulisphaera、Pseudolabrys、Reyranella）和1个真菌属（Mortierella）与发病率和病情指数之间存在显着的负相关性,这几种关键微生物的变化在抵御根肿病菌的入侵中可能发挥着重要作用。综上所述,榨菜移栽时期和土壤微生物代谢与结构多样性是影响根肿病发生的关键因子,且随着植物的生长,植株的防御酶活性越高,抵御芸薹根肿病菌侵染的能力越强,同时,利用育苗基质添加生防菌剂可有效防控根肿病,其中使用生防菌剂枯草芽孢杆菌XF-1在田间防控效果最好,并能富集有益微生物达到对根肿病的协同防控。本研究结果将为十字花科作物根肿病的精准防控提供重要的理论支撑与新的生物防治方法。
王思琦[3]（2021）在《十字花科根肿病综合防控技术研究》文中研究指明十字花科根肿病是由芸薹根肿菌（Plasmodiophora brassicae Worn.）引起的世界性土传病害,严重影响十字花科作物生产。目前,各类防控技术作为降低根肿病发生和危害的主要方法,存在成本高、效率低等问题,根肿病防控技术仍有待完善和提高。本研究旨在建立根肿菌活体定量接种体系,并探索以土壤根肿菌孢子密度为重要参考的防控措施,优化现有防控技术,为根肿病的综合防控提供技术支持。研究结果如下:1.根肿菌活体定量评估体系。建立根肿菌孢子定量数学模型y=[0.6ln（x）+7.8（R2>0.97）],实现根肿菌活体定量评估。定量评估体系实现对不同寄主（油菜、白菜）根肿菌孢子定量分析,且适用不同状态（新鲜、腐烂）的样品定量评估。此外,对根肿菌接种方法进行优化,发现孢子匀浆液作为接种液效率更高,为根肿菌活体接种的定量及标准化提供了理论基础及技术参考。2.日晒覆膜技术可以作为一种根肿病物理防治方法。通过研究温度对根肿菌活性影响,获得根肿菌致死温度为55oC。进一步监测气象和不同土层温度动态变化,结果表明日晒覆膜技术能够提高土壤温度,达到根肿菌致死温度。经过日晒覆膜处理后土壤孢子密度降低,通过接种油菜后发现,日晒覆膜可以有效降低根肿病的发生和危害,且土壤中根肿菌密度较低时,效果较为理想。3.生防细菌Bacillus MCNB19能够用于根肿病防治。将植物根组织分离获得的内生细菌Bacillus 12株,通过真菌对峙培养拮抗筛选发现,内生细菌MCNB19具有较高的抑菌效果。进一步探索生防细菌MCNB19对根肿菌孢子萌发的影响,结果表明该菌株对根肿菌具有较好的抑制效果。盆栽和田间试验表明,生防细菌MCNB19在土壤根肿菌密度较低时,具有较好的防治效果分别为52%和54.6%。4.化学药剂氟啶胺和氰霜唑施用技术改进有效提高根肿病防治效果。氟啶胺和氰霜唑对不同密度根肿菌孢子的萌发均具有抑制作用。结果表明,根肿菌孢子密度在1×103个孢子时,氟啶胺和氰霜唑的抑制率分别达到72.1%和73.9%。随着根肿菌孢子密度增加,抑制效果降低。温室和田间试验表明,孢子密度较低,效果较为理想;灌根施药防效优于喷施施药;植物生长早期施药优于后期;两次施药效果优于一次施药。
张思雨[4]（2020）在《十字花科蔬菜根肿病生防菌的筛选及应用》文中提出芸薹根肿菌（Plasmodiophora brassicae Woronin.）侵染所引起的十字花科蔬菜根肿病是世界性土传病害之一。该病具有传播途径广、传染性强、病原菌在土壤中存活时间长的特点,导致根肿病在我国流行蔓延,严重威胁十字花科蔬菜产业的可持续发展。生物防治因其来源广泛、对人畜安全、高效环保的特点而备受研究者的青睐。本研究旨在获得对根肿病防效稳定的生防菌,为根肿病的生物防治提供理论依据。主要研究结果如下:（1）筛选获得4株对十字花科蔬菜根肿病防效稳定的生防菌。从128份土壤样本中,分离获得生防细菌1198株。采用病原指示菌法进行平板对峙,有抑菌效果的生防菌115株。通过盆栽试验,筛选获得4株对根肿病防效稳定的生防菌ZF129、ZF72、ZF480和ZF481,防效分别为78.26%、74.58%、72.82%和71.23%。（2）确定了本试验分离得到的十字花科蔬菜根肿菌生防菌的分类地位。通过形态特征、培养特征、生理生化特征、Biolog微生物自动鉴定系统以及分子生物学鉴定相结合的方法,确定生防菌ZF480为副地衣芽孢杆菌（Bacillus paralicheniformis）,ZF481、ZF72为贝莱斯芽孢杆菌（Bacillus velezensis）,ZF129为多粘芽孢杆菌（Bacillus polymyxa）。（3）初步明确了生防菌对十字花科蔬菜根肿病的作用方式。菌株ZF129、ZF480、ZF72可以促进肿根腐烂,刺激休眠孢子萌发,使根肿菌休眠孢子未找到寄主提前萌发而死亡。菌株ZF481、ZF72和ZF129对休眠孢子致死率分别为47.63%、39.23%和44.67%,使休眠孢子失活,抑制根肿病的发生。（4）优化了十字花科蔬菜根肿病生防菌发酵条件,在田间试验中取得良好的防治效果。菌株ZF480最佳发酵培养基组分是:山梨醇0.2%、胰蛋白胨1%、氯化钙0.7%和氯化镁0.7%;最适发酵条件为:pH 8,温度30℃,装液量100 mL/250 mL,接菌量3%,转速180 r/min。菌株ZF481最佳培养基组分是:山梨醇0.5%,麸皮1.5%,氯化钙0.1%和硫酸镁0.5%;最适发酵条件为pH 6,温度30℃,装液量50 mL/250 mL,接菌量4%,转速180 r/min。ZF72最佳培养基组分是:山梨醇0.3%、麸皮0.8%、氯化钙0.1%和六水氯化镁0.3%;最适发酵条件:pH 6,温度28℃,装液量50 mL/250 mL,接菌量1%,转速180 r/min。ZF129最佳培养基组分是:玉米粉1.63 g,棉籽饼粉1.43 g,磷酸氢二钾1.07 g;最适发酵条件:pH 8,温度28℃,装液量40 mL/250mL,接菌量5%,转速160 r/min。在十字花科根肿病圃防效试验中,菌株ZF480、ZF481、ZF72和ZF129的防效分别达64.08%、60.61%、63.82%和64.49%。通过对防治根肿病的生防资源的挖掘,获得了4株对十字花科蔬菜根肿病防效高且稳定的生防菌,为根肿病的生物防治和进一步实施减肥减药政策方针提供理论依据。
田洪银[5]（2020）在《大白菜抗根肿病基因BraA.PB.1.2与BraA.Pb.8.2的初步定位》文中进行了进一步梳理大白菜是十字花科芸薹属植物,最早起源于中国,是中国种植面积最大的蔬菜作物,在人民的生活中有十分巨大的食用价值和营养价值。十字花科根肿病是由根肿菌Plasmodiophora brasicae Woronin引起的一种土传病害,对各种十字花科作物有致命的伤害,是世界上对芸薹作物的重要疾病之一。该病传播迅速,目前对各种各样的十字花科蔬菜生产构成了严重威胁,尤其是对大白菜的品质及产量影响非常巨大。随着我国大白菜种植面积的增加,根肿病的侵害也越来越严重,挖掘新的抗性基因,转育出新的抗病品种是目前最有效的也是最直接的防治根肿病的方式。经过数年的接种鉴定,CR026是对根肿病有非常良好的抗性的大白菜品种,为了明确其抗病基因,开发连锁标记,本研究用高感大白菜自交品种17A12A与CR026进行杂交得到F1代,经过F1代自交得到F2代,对F2代进行接菌鉴定,选择20棵极端抗病单株,20棵极端感病单株,利用BSA（分离群体分组分析）法建立抗病池和感病池,用653对SSR、Indel和SNP标记对其进行筛选。179棵F2代植株自交得到179个F2:3家系,使用分子标记与接菌表型进行筛选,最终获得了与抗根肿病紧密连锁的分子标记,对抗病基因进行了初步定位。得到以下结果:1、对72棵F1代进行接菌鉴定,发现F1代表现为感病,F1代自交得到F2代,在F2代表现出抗感分离。利用BSA重测序发现,在A01与A08染色体上存在明显的变异位点。再用179个F2:3家系接菌,通过接菌结果发现F2的抗病与感病的比例为R∶S=12∶167,卡方检验χ2=0.062<5.99符合1:15的分离比,因此推断根肿病抗性由两个互为独立隐性基因控制,并将A01染色体上的位点命名为BraA.PB.1.2,将A08染色体上的位点命名为BraA.Pb.8.2。2、对179个F2:3家系进行分子标记筛选,在653对引物中,有多态性的引物共113对,其中A01染色体上有17对,A08上有20对,在A01染色体上有6个SSR标记与抗病基因连锁,上游分别为C230、C228和C141,下游分别为ACMP473、C234和ACMP334,其中两个最近的侧翼标记为C230与ACMP473遗传距离为4.9 cM,物理距离为0.44 Mb。在A08染色体上有2个SSR标记和3个SNP标记与抗病基因连锁,上游分别为S044、C353,下游分别为A08-107、A08-108、A08-106。两个最近的侧翼标记遗传距离为11.8 cM,物理距离为2.09 Mb。3、通过对F2:3家系的基因型和表型联合分析发现,当两个基因都是纯合时,植株表现为绝对抗病;当BraA.PB.1.2纯合BraA.Pb.8.2杂合时或者BraA.PB.1.2杂合BraA.Pb.8.2纯合时抗病性较差,两个基因型杂合或者为感病基因型时则完全感病。再经过85棵F2抗病植株与96棵感病植株的基因型与表型验证,发现结果与上述一致,因此证明了两个基因为隐性纯合抗病基因,并且为功能互补、独立遗传两个抗病基因。综上所诉,本研究通过构建了F2代群体,进一步获得了F2:3家系,使用韩国KEL23根肿菌进行接种,完成了对抗病品种CR026中含有的抗根肿病基因的初步定位,开发并验证了与BraA.PB.1.2、BraA.Pb.8.2基因紧密联锁的分子标记,这些标记可以应用到大白菜抗根肿病的选择中,提供了新的抗源,为今后进一步研究抗病基因的分子功能奠定基础。
郭玲玲[6]（2020）在《大白菜根肿病抗性基因BrA.Pb8.3的初步定位》文中认为大白菜是十字花科芸薹属蔬菜作物之一,但是近年来由于根肿病的加速蔓延,根肿病已经成为十字花科蔬菜作物生产上的主要病害,严重影响其产量和品质。根肿病是受到十字花科芸薹属根肿菌（Plasmodiophora brassicae）的侵染,最后导致引发了这种在土壤中传播的病害,它的特点具有专性寄生性（Ludwig Muller J et al.,1999）。根肿菌随着农事操作、流水等方式的快速传播及休眠孢子在土壤中较长的存活时间是导致根肿病防治困难的主要原因。本研究利用实验室多次接菌鉴定的表型结果,对大白菜抗病材料?377?和高感根肿病材料?12A?为亲本进行自交后构建F2群体,接种后进行根肿病表型鉴定。针对F2群体表型鉴定结果分析了该试验抗根肿病材料的遗传规律,通过构建抗感病植株混池,SSR标记的筛选,构建出遗传图谱和物理图谱,并对试验材料中含有的抗病基因进行了初步定位。实验结果如下:1.抗病亲本材料?377?与感病材料?12A?杂交获得的F1在接菌后表型为抗病,自交后代F2群体有470个单株,对470个单株根肿菌的接种鉴定,根据分级标准得到的鉴定结果为抗病植株357株,感病植株达到113株,在经过卡方测验后,得到的实际数值与理论上获得的值在差异上不存在显着的特点,与孟德尔遗传定律3∶1的分离比例一致（X2=0.18<X20.05=3.84）,说明该材料根肿病抗性主要受一个显性主效基因控制,即大白菜抗根肿病材料?377?的抗病性是由显性单基因控制的。2.本研究以F2代群体中植株极端表型构建混池,即选择发病等级为0级和3级构建抗感混池进行BSA测序,使用筛选出的10对具有多态性的SSR标记对抗性基因进行定位。利用JoinMap4.0软件和Mapchart构建物理图谱和遗传图谱,在大白菜的第8条染色体标记sau6127与Acmp08-2确定了抗病位点,命名为‘BrA.Pb8.3’。在标记sau6127与Acmp08-2附近及区间内设计的6对引物对获得的重组体进行基因型验证,对鉴定结果进行分析最终将根肿病抗性材料?377?中抗性基因BrA.Pb8.3定位在在大白菜染色体第8条染色体上,位于标记sau-6127与Acmp08-2之间,与抗病基因最近的标记遗传距离为0.6cM。
张劭兵[7]（2019）在《青花菜主要病虫害化学农药协同增效及应用技术研究》文中研究表明青花菜是人们日常食用的蔬菜之一,以其营养价值高而广受欢迎。在其生长过程中主要病虫害有斜纹夜蛾、小菜蛾、甜菜夜蛾、菜青虫、蚜虫、根肿病、菌核病等。随着青花菜大面积种植,病虫害发生程度不断加重,化学农药使用量逐年增加,对土壤和地下水造成严重污染,农残问题日益凸显。为减少化学农药使用量,保障舌尖上的安全,本文在对斜纹夜蛾、小菜蛾单剂敏感性检测的基础上,进行协同增效药剂组合筛选,并开展组合药剂、助剂添加减水减药田间防效验证;同时探究了不同施药方式对青花菜根肿病的田间防效试验,主要结果如下:1、靶标害虫室内敏感性检测筛选出4种具较高毒力的单剂:甲氨基阿维菌素苯甲酸盐、高效氯氟氰菊酯、氯虫苯甲酰胺、氟氯虫双酰胺;筛选出3组对斜纹夜蛾具增效作用的药剂组合:甲氨基阿维菌素苯甲酸盐:氯虫苯甲酰胺质量比1:5,1:7,1:9,1:11、甲氨基阿维菌素苯甲酸盐:高效氯氟氰菊酯质量比1:3,1:5,1:7,1:9、甲氨基阿维菌素苯甲酸盐:氟氯虫双酰胺质量比1:3;筛选出2组对小菜蛾具增效作用的药剂组合:甲氨基阿维菌素苯甲酸盐:虱螨脲质量比1:3,1:5、阿维菌素:氟氯虫双酰胺质量比1:2,1:3,1:4。2、组合药剂及助剂添加减水减药田间防效试验结果表明:甲氨基阿维菌素苯甲酸盐与氯虫苯甲酰胺桶混处理均表现出对斜纹夜蛾、小菜蛾较高的田间防效,其速效性（1d-2d）极显着高于单剂处理,对斜纹夜蛾1d校正防效为85.40%,对小菜蛾2d的校正防效为77.09%。在单剂及组合药剂中添加助剂 N380、WS10、T1602均起到减药减水增效作用,以“5%甲氨基阿维菌素苯甲酸盐WP+5%氯虫苯甲酰胺SC+助剂”处理防治效果最好,在药、水减少25%,7d-14d的校正防效均超过90%。3、不同施药方式防治青花菜根肿病试验结果表明:药浆蘸根处理和药液灌根处理优于药剂拌土处理;在低浓度（3495mL/hm2）处理下,药浆蘸根处理的校正防效为89.36%,在高浓度（4995mL/hm2）处理下,药浆蘸根处理的校正防效91.48%。
关格格[8]（2019）在《芸薹根肿菌分子检测与田间时空动态分析》文中认为根肿病是由芸薹根肿菌（Plasmodiophora brassicae）引起的一种土传病害,在世界范围内十字花科作物产区均有发生,造成严重经济损失。根肿菌在土壤中能够长期存活,使得根肿病的防控手段有限,导致该病害不断发生和蔓延。本研究采用分子生物学技术,初步建立芸薹根肿菌早期诊断方法和定量检测体系,用于监测田间时空动态变化,为研究根肿菌的成灾和根肿病的流行提供了理论参考及技术支持。主要研究结果如下:1.基于常规PCR技术建立根肿病的早期诊断方法。该方法能够特异性检测芸薹根肿菌DNA,而对代表性的真菌、细菌、线虫及寄主植物内生菌等没有扩增产物。灵敏性检测表明,根肿菌DNA最低浓度1×10-3 ng/μL,土壤带菌最低浓度为1×103个孢子/克土,种子带菌最低浓度1×105个孢子/克种子。同时,该方法能够用于多种十字花科作物（包括罹病油菜、白菜、茎瘤芥、甘蓝、萝卜）的根肿病早期诊断与预测,也能够用于不同播种阶段的油菜根部及其根围土壤的田间带菌检测。2.利用qPCR方法构建根肿菌定量检测体系。该体系能够用于根肿菌孢子及土壤、种子和罹病寄主植株的带菌定量检测。灵敏性分析表明,qPCR方法能够检测根肿菌孢子最低浓度为1×101个孢子,土壤带菌最低浓度为1×103个孢子/克土,植物（油菜、白菜和榨菜）带菌最低浓度为1×103个孢子/克根组织,种子带菌最低浓度为1×103个孢子/克种子。此外,比较发现不同样品的回归曲线呈平行关系,且样品浓度在1×105水平下,理论与实际浓度水平差异较小,且根肿菌孢子浓度与病情指数呈正相关。该检测体系具有评估田间根肿病的发生与流行预警的可能性。3.应用早期诊断和定量检测技术,监测田间根肿菌群体的时空动态。在时间动态方面,同一生长季内根肿菌的群体密度随时间呈先降后升趋势。在空间动态方面,根肿菌主要垂直分布在地下0?50cm范围内,并具有动态分布特点。其中,播种后4周根肿菌主要集中在20?40cm的土层范围内,8周则聚集在0?30cm的范围内。水平分布发现,田间根肿菌群体密度与病害发生具有相关性,存在分布集中区域（即病害热点）,且经过一个生长季节后将出现新的潜在病害热点现象。本研究建立根肿菌的早期诊断方法和定量检测体系,初步实现田间根肿菌的精准检测及群体动态监测,为根肿病的早期预警及流行预测等提供理论参考和技术支持。
张炜[9]（2019）在《甘蓝抗根肿病的指标体系构建》文中研究表明根肿病,是一种由芸薹根肿菌侵染引起的土传性病害。植株苗期感病,继而主根肿大,最终导致植株断垄绝收,且病原菌有传播速度快,存活时间长,危害大,防治困难等特点,故而在全世界都“享有盛誉”。自根肿病传入我国以来,随着时间的推移快速的发展,对我国十字花科经济作物造成的损失逐年增加。随着对十字花科根肿病的防治研究不断的深入,目前普遍认为,培育抗病品种是一种最经济、最有效、最环保的防治根肿病的方法,但对培育出的品种的抗感性强弱我们不得而知,因而如何快速准确的鉴定出品种的抗感性至关重要。因此,本文以十字花科作物甘蓝为试验材料,研究不同抗性品种的甘蓝在接种根肿菌后,各个抗性指标的变化,旨在找出不同抗性甘蓝之间的差异,并对各个抗性指标之间的相关性进行分析,建立一套甘蓝抗根肿病的指标体系,为后续培育抗病品种,防治根肿病提供参考。主要研究结果如下:1.11个甘蓝品种抗感性测定对11个甘蓝品种进行发病率和病情指数的测定,研究结果表明,青莲甘蓝（发病率15.4%,病情指数10.4）和绿抗九号（发病率18.6%,病情指数12.9）表现为抗病,西园六号（发病率28.2%,病情指数21.3）和83号（发病率42.0%,病情指数82.9）表现为耐病,西园四号（发病率53.6%,病情指数50.0）表现为感病,CR17-1（发病率100.0%,病情指数89.8）、CR17-2（发病率85.0%,病情指数72.2）、CR17-3（发病率95.0%,病情指数85.5）、CR17-5（发病率100.0%,病情指数93.2）、CR17-6（发病率81.4%,病情指数78.9）和CR17-7（发病率69.3%,病情指数56.3）表现为高感。2.早期筛选抗病品种方法的确立（1）不同抗性甘蓝品种早期根毛和皮层侵染研究采用水培法,对12个甘蓝品种在早期进行根毛和皮层的显微观察,发现感病品种的根毛侵染率高于耐病品种,后者高于抗病品种,且感病品种的侵染高峰在第10d,而耐病和抗病品种侵染高峰在13d;感病品种接种16d后的皮层侵染数也显着高于耐病品种,后者高于抗病品种。因此根毛侵染率和皮层侵染数可以作为评价甘蓝抗感性的抗性指标。（2）不同抗性甘蓝品种早期根内含菌量研究采用水培法,通过RT-qPCR对12个甘蓝品种在早期进行根内含菌量的测定,测得青莲甘蓝、绿抗九号、西园六号、83号、西园四号、京丰一号、CR17-7、CR17-2、CR17-6、CR17-3、CR17-1、CR17-5的含菌量高峰都出现在第10d,分别为（lgPbDNA=5.35fg、5.61fg、5.95fg、6.01fg、6.06fg、6.10fg、6.11fg、6.26fg、6.60fg、6.41fg、6.76fg、6.84fg）。且在接种第4d、10d、16d三个时间点上,都呈现先上升后下降的趋势,且抗病品种、耐病品种、感病品种的根内含菌量均有显着性差异。因此可以通过qPCR定量根内含菌量,追踪根肿菌在寄主根内早期发展状态,作为评价甘蓝抗感性的抗性指标。3.不同抗性甘蓝品种根肿病相关生理生化指标研究以筛选出5个存在抗性梯度的甘蓝品种为研究对象,采用水培法,测定甘蓝在接种根肿菌后,甘蓝根部的POD、SOD、CAT活性的变化,以及MDA含量和可溶性糖含量的变化差异。试验结果表明:（1）抗氧化酶活性:不同抗性的甘蓝品种接种根肿菌后,POD、SOD和CAT的活性在试验阶段,抗病品种都高于耐病品种,后者高于感病品种,且在第10d时差异最为显着,即POD、SOD和CAT活性越大则甘蓝的抗性越高,所以POD、SOD和CAT活性可以作为评价甘蓝抗感性的抗性指标。（2）丙二醛（MDA）含量:不同抗性的甘蓝品种接种根肿菌后,根内MDA含量在整个试验阶段中,感病品种都高于耐病品种,后者高于抗病品种,且都存在着显着的差异,即MDA含量越高则甘蓝抗性越低,所以MDA含量可以作为评价甘蓝抗感性的抗性指标。（3）可溶性糖含量:不同抗性的甘蓝品种接种根肿菌后,可溶性糖含量在试验中后期阶段,抗病品种都高于耐病品种,后者高于感病品种,且随着侵染时间的增加,差异就越显着,即可溶性糖含量越高则甘蓝抗性越高,所以可溶性糖可以作为评价甘蓝抗感性的抗性指标。4.甘蓝抗根肿病指标体系的构建通过对不同抗性甘蓝品种的抗性指数以及各个抗性指标的相关性分析,得出了甘蓝在接种根肿菌后第10d时,抗性指数以及抗性指标之间的联系最为紧密,相关性最高,因此我们将甘蓝在接种根肿菌第10d时,根毛侵染率、皮层侵染数、根内含菌量、POD、SOD、CAT、MDA和可溶性糖这8个抗性指标构建成一个体系,作为在早期筛选抗根肿病的甘蓝品种。5.甘蓝抗根肿病的体系在白菜上的应用甘蓝抗根肿病的体系应用在不同抗性的白菜上,通过对抗性体系中的指标进行测定,得出根毛侵染率、皮层侵染数、根内含菌量和MDA含量与寄主的病情指数呈正相关,POD、SOD、CAT和可溶性糖与寄主的病情指数呈负相关。
赵倩[10]（2019）在《不同药剂对根肿病的防效及土壤理化和微生物的变化》文中认为十字花科植物根肿病是一种严重的土传病害,由芸薹根肿菌（Plasmodiophora brassicae）侵染所引起。当环境有利于根肿病发病的时候,植物根部肿大,水分和养分的吸收受到阻碍,导致作物的品质和产量下降,严重时甚至全部绝收。该病最主要的防治措施措施仍是化学防治。在应用方面,由于过量施药和资源利用率低等问题,极大地破坏了土壤微生态群落结构,导致土壤性状恶化,造成利于根肿病发病的环境,从而加重了根肿病的发生与危害。土壤环境中的温度、湿度、pH值、光照、微量元素及土壤微生物对根肿病的发生和流行都存在着重要的影响。本实验根据根肿菌的发病规律及其生物学特性,以感病寄主“早熟5号”白菜和油菜品种为供试寄主,使用枯草芽孢杆菌（XF-1）、新型石灰氮、生石灰、土壤调理剂等4种药剂对根肿病进行药剂防效实验,并采用土壤pH仪检测土壤pH的变化,采用原子吸收分光光度法检测土壤矿质元素的变化,采用宏基因组16S rDNA及18S rDNA测序检测土壤微生物种类和数量的变化。主要研究结果如下:1.不同药剂处理对根肿菌休眠孢子萌发的影响采用休眠孢子萌发法研究了4种药剂对根肿病菌休眠孢子萌发的影响,结果表明:4种药剂对根肿病休眠孢子的萌发抑制率大小顺序依次为:生石灰75.05%、土壤调理剂71.51%、石灰氮67.67%、枯草芽孢杆菌（XF-1）61.19%。2.室内盆栽实验筛选合适的药剂浓度采用人工接种的方式通过室内盆栽实验测定了4种药剂对根肿病的防治效果,并筛选出合适的浓度进行田间防效实验。4种药剂防治根肿病效果最好的是枯草芽孢杆菌（XF-1）,其防治效果为91.44%,土壤调理剂88.57%、生石灰88.57%、石灰氮68.58%。枯草芽孢杆菌（XF-1）A2组600倍浓度稀释处理、生石灰B2组浓度处理450 g/盆、石灰氮C4组浓度处理900 g/盆、土壤调理剂D1组浓度处理250 g/盆,为优势处理,其浓度用于田间防效实验。3.田间药剂实验3.1郫都区唐昌镇星罗村枯草芽孢杆菌（XF-1）发病率最低,防治效果高达81.66%,为优势处理;其余3种药剂处理防效从高到低依次为:石灰氮72.48%>土壤调理剂58.41%>生石灰56.67%。田间收获后调查小白菜鲜重表明,对照区发病严重,鲜重1286.35 Kg/667m2,长势劣势,产量较低,发病严重的腐烂甚至绝收。与药剂处理后小白菜鲜重对比,药剂处理后的小白菜明显长势好,产量高,土壤调理剂处理过后鲜重为2802.36Kg/667m2,生石灰2886.26 Kg/667m2,石灰氮2770.50 Kg/667m2,为优势处理,枯草芽孢杆菌（XF-1）3185.89 Kg/667m2,为最优势处理。3.2什邡市南泉镇瑞虹村空白对照组发病率93.20%,枯草芽孢杆菌（XF-1）处理后的发病率为60.00%,防治效果达到了81.51%。药剂处理过的油菜重量达到2651.33 Kg/667m2,主根非常健壮,粗而长,侧根繁茂,油菜直径大,叶片绿而多;空白对照区的油菜重量为391.86Kg/667m2,普遍比药剂处理过的油菜小,主根短而细,严重的甚至腐烂在土壤里,侧根数很少,叶片发黄。4.土壤理化性状的测定4.1室内实验pH的变化施药前土壤pH值为6.0,为偏酸性土壤,利于根肿病发病。药剂处理土壤后,生石灰处理过的土壤pH值最高为7.5;其次是土壤调理剂和新型石灰氮,pH值分别为6.7和6.5;再次是枯草芽孢杆菌XF-1,pH值为6.3。生石灰、石灰氮和土壤调理剂将土壤环境调节至偏碱性,造成不利于根肿病发生的条件,以达到一定的防治效果。4.2郫都区唐昌镇星罗村田间实验地pH的变化施药前土壤pH值为6.3,为偏酸性土壤,利于根肿病发病。经过药剂处理后,pH值均有所上升,土壤调理剂处理过后pH为6.6,枯草芽孢杆菌（XF-1）处理后pH为6.5,生石灰处理后pH为7.0,石灰氮处理后pH为6.7。4.3什邡市南泉镇瑞虹村田间实验地pH的变化施药前土壤pH值为5.83,为酸性土壤,极利于根肿病的发生。枯草芽孢杆菌（XF-1）处理后土壤pH值调节为6.42。4.4土壤元素的变化与空白对照组对比,生石灰、石灰氮、XF-1、土壤调理剂施用后全镁含量均有所升高,土壤调理剂差异最为显着;施用土壤调理剂、XF-1、石灰氮、生石灰后全钙含量均有所提高,土壤调理剂差异最为显着;与空白对照组对比,生石灰、XF-1、土壤调理剂施用后全磷含量降低,石灰氮含量升高,但差异不显着。5.郫都区唐昌镇星罗村田间施药后土壤微生物种类和数量的检测采用宏基因组16S rDNA及18S rDNA测序检测土壤微生物种类和数量的变化。与空白对照组相比,施药后细菌和真菌的数量都明显增多。根据Alpha多样性指数统计细菌中石灰氮处理后和枯草芽孢杆菌（XF-1）处理后土壤物种多样性最高。真菌中土壤调理剂处理后土壤物种多样性最高。土壤样本细菌门水平下检测出来比例最高的均是变形菌门（Proteobacteria）,为优势细菌类群,主要包括根瘤菌目（Rhizobiales）、鞘脂单胞菌目（Sphingomonadales）组成。细菌属水平下检测种群差异不明显,只是比例存在差异性。由于枯草芽孢杆菌（XF-1）是生防菌,它对根肿病产生的是直接作用,其他药剂施用后细菌和真菌的数量都明显增多的调控作用也是其土壤微生态的调控机制。
二、十字花科作物根肿病药效试验初报（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、十字花科作物根肿病药效试验初报（论文提纲范文）
（1）甘蓝抗根肿病种质资源鉴定及抗性相关基因挖掘（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 符号说明 |
| 第一章 文献综述 |
| 1.1 十字花科作物根肿病概况 |
| 1.1.1 甘蓝的重要性 |
| 1.1.2 十字花科根肿病的发生以及危害 |
| 1.1.3 根肿病的病症 |
| 1.1.4 病原菌芸薹根肿菌的分类及鉴定 |
| 1.1.5 芸薹根肿菌的生理小种鉴定 |
| 1.1.6 芸薹根肿菌侵染规律 |
| 1.1.7 芸薹根肿菌侵染对寄主植物的影响 |
| 1.2 甘蓝类作物抗根肿病的研究进展 |
| 1.2.1 甘蓝类作物抗根肿病种质资源筛选 |
| 1.2.2 甘蓝类作物根肿病抗性研究进展 |
| 1.2.3 抗根肿病组学研究进展 |
| 1.3 植物nsLTPs的研究进展 |
| 1.3.1 植物nsLTPs的基本特征 |
| 1.3.2 nsLTPs的生物学功能 |
| 1.4 植物几丁质酶的研究进展 |
| 1.4.1 植物几丁质酶的特征特性 |
| 1.4.2 几丁质酶的生物学功能 |
| 1.5 研究技术路线 |
| 1.6 研究目的和意义 |
| 第二章 甘蓝抗根肿病种质资源的筛选与鉴定 |
| 2.1 材料与方法 |
| 2.1.1 试验材料 |
| 2.1.2 芸薹根肿菌休眠孢子的收集和显微观察 |
| 2.1.3 芸薹根肿菌分子鉴定 |
| 2.1.4 特异条带回收测序 |
| 2.1.5 芸薹根肿菌生理小种鉴定 |
| 2.1.6 甘蓝种质资源抗性鉴定及筛选 |
| 2.1.7 甘蓝种质资源抗性评价 |
| 2.2 结果与分析 |
| 2.2.1 土壤和病根芸薹根肿菌镜检 |
| 2.2.2 芸薹根肿菌分子鉴定 |
| 2.2.3 病原菌生理小种鉴定 |
| 2.2.4 甘蓝抗根肿病种质资源鉴定及筛选 |
| 2.2.5 苗期和成株期发病率比较 |
| 2.2.6 苗期和成株期病情指数比较 |
| 2.2.7 抗病材料抗性评价 |
| 2.3 讨论与结论 |
| 第三章 甘蓝响应芸薹根肿菌胁迫相关基因的鉴定与分析 |
| 3.1 材料与方法 |
| 3.1.1 材料 |
| 3.1.2 孢子悬浮液准备 |
| 3.1.3 甘蓝播种和接种 |
| 3.1.4 根部显微观察 |
| 3.1.5 RNA提取、cDNA文库构建及测序 |
| 3.1.6 组装和注释 |
| 3.1.7 表达差异基因分析 |
| 3.1.8 荧光定量PCR(qRT-PCR)分析 |
| 3.2 结果与分析 |
| 3.2.1 根部组织显微观察 |
| 3.2.2 测序和组装 |
| 3.2.3 表达差异基因功能注释 |
| 3.2.4 抗性相关表达差异基因 |
| 3.2.5 qRT-PCR验证转录组基因表达 |
| 3.3 讨论与结论 |
| 第四章 甘蓝nsLTP基因家族的鉴定及BonsLTPI.14和BonsLTPI.5抗根肿病功能验证 |
| 4.1 材料与方法 |
| 4.1.1 材料和引物 |
| 4.1.2 BonsLTP基因家族完整序列分析 |
| 4.1.3 BonsLTPs蛋白特征分析和系统进化树构建 |
| 4.1.4 BonsLTPs基因结构和染色体定位和表达谱分析 |
| 4.1.5 BonsLTPs启动子序列的顺式调控元件分析 |
| 4.1.6 BonsLTPs蛋白的亚细胞定位在线预测 |
| 4.1.7 基因全长cDNA序列获得 |
| 4.1.8 重组过表达载体构建 |
| 4.1.9 质粒提取转入根癌农杆菌及鉴定 |
| 4.1.10 转化和检测 |
| 4.1.11 转化植株抗病性鉴定 |
| 4.2 结果与分析 |
| 4.2.1 BonsLTP基因家族的鉴定 |
| 4.2.2 BonsLTPs的ECM结构特征统计及分类 |
| 4.2.3 甘蓝BonsLTPs和拟南芥AtnsLTPs的系统进化分析 |
| 4.2.4 BonsLTPs基因的物理定位 |
| 4.2.5 BonsLTPs基因在不同组织部位的表达 |
| 4.2.6 抗根肿病相关BonsLTPs基因的筛选 |
| 4.2.7 抗根肿病相关BonsLTPs基因启动子序列分析 |
| 4.2.8 抗根肿病相关BonsLTPs蛋白在烟草中的亚细胞定位分析 |
| 4.2.9 BonsLTPI.5和BonsLTPI.14抗根肿病验证 |
| 4.3 讨论和结论 |
| 4.3.1 nsLTPs基因的系统分类和表达特征聚类 |
| 4.3.2 nsLTPs基因在抗病中的作用 |
| 第五章 甘蓝几丁质酶基因家族的鉴定及BoChiAIV.6和BoChiAIV.14抗根肿病功能验证 |
| 5.1 材料与方法 |
| 5.1.1 材料和引物 |
| 5.1.2 BoChiAs基因家族完整序列分析 |
| 5.1.3 BoChiAs蛋白特征分析和系统进化树构建 |
| 5.1.4 BoChiAs基因结构和染色体定位和表达谱分析 |
| 5.1.5 BoChiAs基因启动子顺式调控元件分析 |
| 5.1.6 BoChiAs蛋白的亚细胞定位在线预测 |
| 5.1.7 基因全长cDNA序列获得 |
| 5.1.8 重组过表达载体构建 |
| 5.1.9 质粒提取转化根癌农杆菌及鉴定 |
| 5.1.10 转化和检测 |
| 5.1.11 转化植株抗病性鉴定 |
| 5.2 结果与分析 |
| 5.2.1 BoChiAs基因家族的鉴定 |
| 5.2.2 BoChiAs基因及编码蛋白结构特征分析和分类 |
| 5.2.3 甘蓝BoChiAs和其他十字花科作物几丁质酶的系统进化分析 |
| 5.2.4 BoChiAs基因的物理定位 |
| 5.2.5 BoChiAs基因在不同组织部位的表达 |
| 5.2.6 抗根肿病相关BoChiAs基因的筛选 |
| 5.2.7 响应芸薹根肿菌相关BoChiAs基因启动子序列分析 |
| 5.2.8 响应芸薹根肿菌相关BoChiAs蛋白亚细胞定位预测分析 |
| 5.2.9 BoChiAIV.6和BoChiAIV.14抗根肿病验证 |
| 5.3 讨论和结论 |
| 5.3.1 ChiAs基因的结构特征和进化 |
| 5.3.2 ChiAs基因在抗病中的作用 |
| 全文结论 |
| 参考文献 |
| 附录 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 |
| 致谢 |
（2）影响榨菜根肿病发病的关键因子及生防菌的控病作用研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第一章 文献综述 |
| 1 根肿病菌生物学特性及危害 |
| 1.1 芸薹根肿病菌原特性 |
| 1.2 芸薹根肿病的发生及危害 |
| 1.3 根肿病的防治 |
| 2 根际微生物与土传病害的关系 |
| 2.1 根际微生物群落的结构与功能特征 |
| 2.2 根际微生态与根肿病发病的关系 |
| 2.3 根际微生物抑制土传病害的机制 |
| 3 生防菌对土传病害的防治及微生态效应 |
| 3.1 生防菌对根际微生物群落结构多样性的影响 |
| 3.2 生防菌对根际微生物功能多样性的影响 |
| 3.3 生防菌在病害防控中的应用 |
| 4 选题依据及切入点 |
| 4.1 选题依据 |
| 4.2 研究切入点及意义 |
| 4.3 技术路线 |
| 第二章 榨菜移栽时期对根肿病发生的影响研究 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 供试材料 |
| 1.2 试验设计 |
| 1.3 榨菜根肿病害调查 |
| 1.4 榨菜根系活力与叶绿素含量测定 |
| 1.5 榨菜抗病相关酶活指标测定 |
| 1.6 数据分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 不同移栽时期的榨菜对根肿病的抗病效果 |
| 2.2 不同移栽时期的榨菜根系活力与叶绿素含量特征 |
| 2.3 不同移栽时期的榨菜抗病相关酶活指标特征 |
| 2.4 不同移栽时期的榨菜生理生化特征与根肿病发生的相关性分析 |
| 3 小结与讨论 |
| 3.1 小结 |
| 3.2 讨论 |
| 第三章 榨菜根际土壤因子对根肿病发生的影响研究 |
| 第一节 榨菜根际土壤理化因子对根肿病发生的影响研究 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 土壤样品采集 |
| 1.2 供试药剂 |
| 1.3 土壤理化性质检测方法 |
| 1.4 土壤FDA水解酶活性检测方法 |
| 1.5 数据分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 根肿病发病与健康根际土壤理化性质差异分析 |
| 2.2 根肿病发病与健康根际土壤FDA酶活差异分析 |
| 3 小结与讨论 |
| 3.1 小结 |
| 3.2 讨论 |
| 第二节 榨菜根际土壤微生物因子对根肿病发生的影响研究 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 供试材料 |
| 1.2 土壤微生物群落对不同碳源利用的测定 |
| 1.3 土壤微生物总DNA提取 |
| 1.4 数据分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 榨菜根肿病发病与健康根际土壤微生物代谢碳源能力差异分析 |
| 2.2 榨菜根肿病发病与健康根际土壤微生物代谢多样性差异分析 |
| 2.3 榨菜根肿病发病与健康根际土壤微生物结构多样性差异分析 |
| 2.4 榨菜根肿病发病与健康根际土壤微生物群体网络差异分析 |
| 3 小结与讨论 |
| 3.1 小结 |
| 3.2 讨论 |
| 第四章 育苗基质添加生防菌剂对榨菜根肿病的防控作用研究 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 供试材料 |
| 1.2 试验地点 |
| 1.3 试验设计 |
| 1.4 榨菜(榨菜)农艺性状及病害调查 |
| 1.5 榨菜产量统计 |
| 1.6 土壤微生物群落代谢活性研究方法 |
| 1.7 土壤微生物群落组成研究方法 |
| 1.8 数据分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 不同处理对榨菜生长及根肿病的影响 |
| 2.2 不同处理对土壤微生物代谢利用分析 |
| 2.3 不同处理对土壤微生物群落多样性的分析 |
| 2.4 不同处理对土壤微生物群落组成的分析 |
| 2.5 不同处理影响榨菜根肿病发生的关键微生物群落 |
| 2.6 不同处理影响土壤微生物与根肿病发生的相关性分析 |
| 3 小结与讨论 |
| 3.1 小结 |
| 3.2 讨论 |
| 第五章 主要结论与展望 |
| 1 主要结论 |
| 2 创新点 |
| 3 展望 |
| 参考文献 |
| 附表 |
| 致谢 |
| 在读期间发表的论文情况 |
（3）十字花科根肿病综合防控技术研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 第一章 根肿病研究进展 |
| 1 十字花科根肿病 |
| 1.1 根肿病分布 |
| 1.2 根肿病症状 |
| 1.3 根肿病危害 |
| 2 芸薹根肿菌 |
| 2.1 分类与生理小种 |
| 2.2 寄主范围与侵染过程 |
| 2.3 生物学特性 |
| 2.4 活体接种方法 |
| 2.5 根肿菌检测 |
| 3 综合防治 |
| 3.1 农业防控 |
| 3.2 化学防控 |
| 3.3 生物防控 |
| 3.4 抗病育种 |
| 4 研究目的与意义 |
| 第二章 根肿菌接种体活体定量评价 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.2 方法 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 接种液制备方法优化 |
| 2.2 数据拟合及模型建立 |
| 2.3 定量检测体系评价 |
| 2.4 人工接种评价 |
| 2.5 不同接种体孢子定量分析 |
| 2.6 田间样品诊断 |
| 3 小结 |
| 第三章 日晒覆膜技术防控根肿病 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.2 方法 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 温度对孢子萌发影响 |
| 2.2 气温与土壤温度相关性 |
| 2.3 覆膜效果评价 |
| 2.4 田间试验 |
| 3 小结 |
| 第四章 芽孢杆菌对根肿病防控评价 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.2 方法 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 芽孢杆菌分离与鉴定 |
| 2.2 芽孢杆菌的平板对峙筛选 |
| 2.3 芽孢杆菌对根肿菌孢子萌发率影响 |
| 2.4 温室防控效果评价 |
| 2.5 田间防控效果评价 |
| 3 小结 |
| 第五章 化学药剂施用方式改良提高根肿病防控效果 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.2 方法 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 氟啶胺对根肿病防控影响 |
| 2.2 氰霜唑对根肿病防控影响 |
| 3 小结 |
| 第六章 结论与讨论 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 攻读硕士学位期间发表论文 |
（4）十字花科蔬菜根肿病生防菌的筛选及应用（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 第一章 引言 |
| 1.1 十字花科蔬菜根肿病概况 |
| 1.2 十字花科根肿病的防治方法 |
| 1.3 生防芽孢杆菌研究进展 |
| 1.4 生防菌的发酵工艺优化 |
| 1.5 本研究的目的与意义 |
| 第二章 十字花科蔬菜根肿病生防菌的分离与筛选 |
| 2.1 试验材料与仪器 |
| 2.2 试验方法 |
| 2.2.1 土壤的采集及保存 |
| 2.2.2 十字花科根肿病生防菌的分离 |
| 2.2.3 十字花科根肿病生防菌的筛选 |
| 2.2.4 生防菌对白菜根肿病的盆栽防效 |
| 2.2.5 数据统计与分析 |
| 2.3 结果与分析 |
| 2.3.1 十字花科根肿病生防菌的分离 |
| 2.3.2 十字花科根肿病生防菌的筛选 |
| 2.3.3 生防菌对白菜根肿病的盆栽防效 |
| 2.4 讨论 |
| 2.5 本章小结 |
| 第三章 十字花科蔬菜根肿病生防菌的鉴定 |
| 3.1 试验材料与仪器 |
| 3.2 试验方法 |
| 3.2.1 生防菌的形态学观察 |
| 3.2.2 生防菌的生理生化特征 |
| 3.2.3 生防菌的Biolog微生物鉴定 |
| 3.2.4 生防菌的分子生物学鉴定 |
| 3.3 结果与分析 |
| 3.3.1 生防菌株的形态学观察 |
| 3.3.2 生防菌生理生化特征鉴定 |
| 3.3.3 生防菌的Biolog微生物鉴定 |
| 3.3.4 生防菌的分子生物学鉴定 |
| 3.4 讨论 |
| 3.5 本章小结 |
| 第四章 十字花科蔬菜根肿病生防菌的作用方式 |
| 4.1 试验材料与仪器 |
| 4.2 试验方法 |
| 4.2.1 生防菌对白菜肿根的致腐作用 |
| 4.2.2 生防菌对根肿菌休眠孢子活性影响 |
| 4.2.3 数据统计与分析 |
| 4.3 结果与分析 |
| 4.3.1 生防菌对白菜肿根的致腐作用 |
| 4.3.2 生防菌对根肿菌休眠孢子活性的影响 |
| 4.4 讨论 |
| 4.5 本章小结 |
| 第五章 十字花科蔬菜根肿病生防菌发酵工艺优化及田间防效 |
| 5.1 试验材料与仪器 |
| 5.2 试验方法 |
| 5.2.1 生防菌的培养及生长曲线测定 |
| 5.2.2 生防菌发酵培养基组分的优化 |
| 5.2.3 生防菌发酵条件的优化 |
| 5.2.4 生防菌对根肿病的田间防效 |
| 5.2.5 数据统计与分析 |
| 5.3 结果与分析 |
| 5.3.1 生防菌生长曲线的测定 |
| 5.3.2 生防菌发酵培养基组分的优化 |
| 5.3.3 生防菌发酵条件的优化 |
| 5.3.4 生防菌发酵优化组合验证 |
| 5.3.5 生防菌对根肿病的田间防效 |
| 5.4 讨论 |
| 5.5 本章小结 |
| 第六章 结论 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 个人简介 |
（5）大白菜抗根肿病基因BraA.PB.1.2与BraA.Pb.8.2的初步定位（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 一、文献综述 |
| 1.1 十字花科植物根肿病的研究进展 |
| 1.1.1 十字花科根肿病的起源、危害及发病症状 |
| 1.1.2 根肿菌的生活规律、生活史以及传播途径 |
| 1.1.3 根肿菌生理小种的划分与接种方法 |
| 1.2 十字花科根肿病的综合防治 |
| 1.2.1 农业防治 |
| 1.2.2 化学防治 |
| 1.2.3 生物防治 |
| 1.2.4 抗病育种 |
| 1.3 十字花科植物根肿病抗病基因定位研究进展 |
| 1.3.1 遗传图谱构建 |
| 1.3.2 十字花科根肿病抗病基因定位现状 |
| 1.3.3 植物抗病(R)基因结构 |
| 1.4 DNA分子标记技术及其应用 |
| 1.4.1 分子标记分类 |
| 1.4.2 常用DNA分子标记应用 |
| 1.5 群体分离分析(BSA)技术及其应用 |
| 1.6 本研究的目的及意义 |
| 二、试验材料与方法 |
| 2.1 试验材料 |
| 2.2 试验方法 |
| 2.2.1 大白菜接菌以及抗病性调查 |
| 2.2.2 表型鉴定与分级标准 |
| 2.2.3 DNA提取 |
| 2.2.4 抗感混池构建 |
| 2.2.5 BSA测序 |
| 2.2.6 基因连锁标记开发 |
| 2.2.7 PCR反应扩增技术 |
| 2.2.8 PCR产物检测 |
| 2.2.9 BraA.PB.1.2与BraA.Pb.8.2基因遗传图谱与物理图谱构建 |
| 三、结果与分析 |
| 3.1 大白菜根肿病人工接种鉴定与抗病性遗传学分析 |
| 3.2 BSA数据分析与结果 |
| 3.2.1 BSA数据质控 |
| 3.2.2 BSA测序定位BraA.PB.1.2与BraA.Pb.8.2基因 |
| 3.3 BraA.PB.1.2与BraA.Pb.8.2基因遗传图谱的构建 |
| 3.3.1 A01染色体多态性引物的筛选验证与图谱的构建 |
| 3.3.2 A08染色体多态性引物的筛选验证与图谱的构建 |
| 3.4 F_(2:3)群体表型与基因型关联分析 |
| 3.5 定位结果验证 |
| 3.6 Crr1a的等位基因在CR026中的序列差异分析 |
| 四、讨论 |
| 4.1 大白菜根肿病的抗性遗传规律 |
| 4.2 大白菜抗根肿病分子标记 |
| 4.3 大白菜抗根肿病基因定位及抗病育种展望 |
| 五、结论 |
| 参考文献 |
| 附录 |
| 致谢 |
（6）大白菜根肿病抗性基因BrA.Pb8.3的初步定位（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 1 前言 |
| 1.1 十字花科植物根肿病 |
| 1.1.1 根肿病起源、发病症状及危害 |
| 1.1.2 根肿菌的生活史和生物学特性 |
| 1.1.3 根肿菌检测技术和生理小种的鉴定 |
| 1.1.4 根肿菌接种的方法和病害分级标准 |
| 1.2 根肿病的发病因素与防治 |
| 1.2.1 根肿病的发病因素 |
| 1.2.2 根肿病的防治 |
| 1.3 抗根肿病基因定位研究进展 |
| 1.4 BSA在基因定位中的应用 |
| 1.5 分子育种技术在作物抗病育种中的应用 |
| 1.6 研究目的与意义 |
| 2 试验材料与方法 |
| 2.1 试验材料 |
| 2.2 根肿病人工接种鉴定 |
| 2.2.1 菌液制备 |
| 2.2.2 人工接种 |
| 2.3 病情调查与分级标准 |
| 2.4 基因组DNA的提取及抗感混池构建 |
| 2.4.1 基因组DNA的提取 |
| 2.4.2 抗感混池的构建 |
| 2.4.3 BSA测序 |
| 2.5 亲本引物多态性的筛选 |
| 2.6 基因型的鉴定及图谱构建 |
| 2.6.1 基因型鉴定 |
| 2.6.2 BrA.Pb8.3 基因遗传连锁图谱的构建 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 大白菜根肿病抗性鉴定 |
| 3.2 大白菜根肿病抗性遗传分析 |
| 3.3 BSA测序数据分析 |
| 3.4 SSR引物在感病亲本和抗病亲本基因组DNA中的多态性扩增 |
| 3.5 多态性SSR引物在F2 群体中的多态性扩增 |
| 3.6 抗根肿病基因遗传图谱的构建及定位 |
| 4 讨论 |
| 4.1 大白菜根肿病接种 |
| 4.2 大白菜根肿病鉴定分析 |
| 4.3 大白菜根肿病抗性基因定位 |
| 4.4 根肿病抗性育种展望 |
| 5 结论 |
| 致谢 |
| 参考文献 |
（7）青花菜主要病虫害化学农药协同增效及应用技术研究（论文提纲范文）
| 致谢 |
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 表格清单 |
| 1 文献综述 |
| 1.1 青花菜简介 |
| 1.2 青花菜常见病虫害 |
| 1.2.1 斜纹夜蛾发生规律及抗性 |
| 1.2.2 小菜蛾发生规律及抗性 |
| 1.2.3 根肿病发生规律 |
| 1.3 青花菜病虫害防治现状 |
| 1.3.1 青花菜田常见虫害的防治 |
| 1.3.2 根肿病的防治 |
| 2 引言 |
| 3 材料与方法 |
| 3.1 不同化学药剂室内配方筛选 |
| 3.1.1 供试药剂 |
| 3.1.2 供试虫源 |
| 3.1.3 供试饲料 |
| 3.1.4 供试试剂及仪器 |
| 3.1.5 毒力测定 |
| 3.1.6 数据处理与分析 |
| 3.1.7 共毒系数依据 |
| 3.2 不同助剂各项指标测定 |
| 3.2.1 供试材料 |
| 3.2.2 供试方法 |
| 3.2.3 数据处理与分析 |
| 3.3 斜纹夜蛾及小菜蛾田间防效试验 |
| 3.3.1 试验地概况 |
| 3.3.2 试验材料 |
| 3.3.3 试验设计 |
| 3.3.4 施药时间及施药方法 |
| 3.3.5 调查统计 |
| 3.3.6 数据处理与分析 |
| 3.4 根肿病田间防效试验 |
| 3.4.1 试验材料 |
| 3.4.2 试验地概况 |
| 3.4.3 试验设计 |
| 3.4.4 调查时间及调查方法 |
| 3.4.5 根肿菌分级标准及计算方法 |
| 4 结果分析 |
| 4.1 不同化学药剂室内配方筛选 |
| 4.1.1 不同单剂室内敏感性检测 |
| 4.1.2 不同药剂对斜纹夜蛾室内配方筛选 |
| 4.1.3 不同药剂对小菜蛾室内配方筛选 |
| 4.1.4 几种功能助剂室内各项指标测定 |
| 4.2 青花菜主要病虫害田间防效试验 |
| 4.2.1 不同药剂加助剂对斜纹夜蛾的田间防效试验 |
| 4.2.2 不同药剂加助剂对小菜蛾的田间防效试验 |
| 4.2.3 不同施药方式对根肿病的田间防效试验 |
| 5 讨论 |
| 5.1 不同化学药剂室内配方筛选 |
| 5.1.1 不同单剂室内敏感性检测 |
| 5.1.2 不同药剂对斜纹夜蛾室内配方筛选 |
| 5.1.3 不同药剂对小菜蛾室内配方筛选 |
| 5.1.4 几种功能助剂室内各项指标测定 |
| 5.2 斜纹夜蛾及小菜蛾田间防效试验 |
| 5.2.1 斜纹夜蛾的田间防效试验 |
| 5.2.2 小菜蛾的田间防效试验 |
| 5.3 根肿病田间防效试验 |
| 5.3.1 根肿病的田间防效试验 |
| 参考文献 |
| 作者简介 |
（8）芸薹根肿菌分子检测与田间时空动态分析（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 第一章 芸薹根肿菌及十字花科根肿病的研究进展 |
| 1.1 十字花科根肿病 |
| 1.1.1 根肿病分布 |
| 1.1.2 根肿病症状 |
| 1.1.3 根肿病危害 |
| 1.2 芸薹根肿菌 |
| 1.2.1 分类 |
| 1.2.2 寄主范围 |
| 1.2.3 生物学特性 |
| 1.2.4 侵染过程与传播 |
| 1.2.5 生理小种 |
| 1.3 综合防治 |
| 1.3.1 农业防治 |
| 1.3.2 化学防治 |
| 1.3.3 生物防治 |
| 1.3.4 抗病育种 |
| 1.4 植物病原菌分子检测技术 |
| 1.4.1 分子检测原理及靶标 |
| 1.4.2 聚合酶链式反应 |
| 1.4.3 实时荧光定量PCR |
| 1.5 研究目的与意义 |
| 第二章 十字花科根肿病的早期诊断技术 |
| 2.1 材料与方法 |
| 2.1.1 试验材料 |
| 2.1.2 方法 |
| 2.2 结果与分析 |
| 2.2.1 PCR扩增与优化 |
| 2.2.2 引物特异性 |
| 2.2.3 引物灵敏性 |
| 2.2.4 不同类型样品的带菌检测 |
| 2.3 小结 |
| 第三章 芸薹根肿菌的定量检测体系构建 |
| 3.1 材料与方法 |
| 3.1.1 试验材料 |
| 3.1.2 方法 |
| 3.2 结果与分析 |
| 3.2.1 目的片段转化 |
| 3.2.2 PCR特异性检测 |
| 3.2.3 PCR灵敏性检测 |
| 3.2.4 qPCR标准曲线的建立 |
| 3.2.5 标准曲线的比较 |
| 3.2.6 孢子基准浓度分析 |
| 3.2.7 病情指数与孢子浓度相关性 |
| 3.3 小结 |
| 第四章 田间根肿菌群体与病害发生的时空动态 |
| 4.1 材料与方法 |
| 4.1.1 试验材料 |
| 4.1.2 试验方法 |
| 4.2 结果与分析 |
| 4.2.1 田间孢子时间动态分析 |
| 4.2.2 田间孢子垂直空间动态分析 |
| 4.2.3 水平动态分析 |
| 4.3 小结 |
| 第五章 结论与讨论 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 攻读硕士学位期间发表论文 |
（9）甘蓝抗根肿病的指标体系构建（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 第一章 文献综述 |
| 1.1 根肿病的发生与危害 |
| 1.2 根肿病的症状与抗性鉴定 |
| 1.3 根肿菌的生活史与致病机制 |
| 1.4 实时荧光定量在根肿菌上的应用 |
| 1.5 寄主抗根肿病的生理机制研究 |
| 1.5.1 防御酶与寄主抗病性 |
| 1.5.2 非酶类物质与寄主抗病性 |
| 1.6 根肿病的防治 |
| 1.6.1 抗病品种的选育 |
| 1.6.2 生物防治 |
| 1.6.3 农业防治 |
| 1.6.4 化学药剂防治 |
| 第二章 甘蓝对芸薹根肿菌的抗性鉴定 |
| 2.1 试验材料 |
| 2.1.1 供试病原菌 |
| 2.1.2 供试甘蓝品种 |
| 2.1.3 主要试验仪器 |
| 2.1.4 主要试验试剂 |
| 2.2 试验方法 |
| 2.2.1 根肿菌孢子悬浮液的制备及室内接种 |
| 2.2.2 室内接种发病样品的采集与调查 |
| 2.2.3 发病甘蓝根毛和皮层侵染的观察 |
| 2.2.4 甘蓝根内根肿菌含量的实时荧光定量分析 |
| 2.3 结果与分析 |
| 2.3.1 甘蓝在温室中的发病情况统计 |
| 2.3.2 根毛侵染率统计 |
| 2.3.3 皮层侵染数统计 |
| 2.3.4 根内含菌量统计 |
| 2.4 讨论 |
| 第三章 不同抗性梯度甘蓝根内主要生理生化指标差异分析 |
| 3.1 材料 |
| 3.1.1 供试病原菌 |
| 3.1.2 供试甘蓝品种 |
| 3.1.3 主要试验仪器 |
| 3.1.4 主要试验试剂 |
| 3.2 试验方法 |
| 3.2.1 根肿菌孢子悬浮液的制备及室内接种 |
| 3.2.2 取样 |
| 3.2.3 粗酶液的提取 |
| 3.2.4 丙二醛(MDA)的提取和含量测定 |
| 3.2.5 可溶性糖的提取和含量测定 |
| 3.3 结果与分析 |
| 3.3.1 根肿菌对甘蓝根部抗性指标分析 |
| 3.3.2 根肿菌对甘蓝根部POD活性的影响 |
| 3.3.3 根肿菌对甘蓝根部SOD活性的影响 |
| 3.3.4 根肿菌对甘蓝根部CAT活性的影响 |
| 3.3.5 根肿菌对甘蓝根部MDA含量的影响 |
| 3.3.6 根肿菌对甘蓝根部可溶性糖含量的影响 |
| 3.4 讨论 |
| 第四章 甘蓝抗根肿病的指标之间的相关性分析 |
| 4.1 病情指数与抗性指标的相关性分析 |
| 4.2 根毛侵染率与抗性指标的相关性分析 |
| 4.3 皮层侵染数与抗性指标的相关性分析 |
| 4.4 根内含菌量与抗性指标的相关性分析 |
| 4.5 生理抗性指标相互之间的相关性分析 |
| 4.6 汇总分析 |
| 4.7 讨论 |
| 第五章 甘蓝抗根肿病指标体系在白菜上的应用 |
| 5.1 材料 |
| 5.1.1 供试病原菌 |
| 5.1.2 供试白菜品种 |
| 5.1.3 主要试验仪器 |
| 5.1.4 主要试验试剂 |
| 5.2 试验方法 |
| 5.2.1 根肿菌孢子悬浮液的制备及室内接种 |
| 5.2.2 室内接种发病样品的采集与调查 |
| 5.2.3 取样 |
| 5.2.4 发病白菜根毛和皮层侵染的观察 |
| 5.2.5 粗酶液的提取 |
| 5.2.6 丙二醛(MDA)的提取和含量测定 |
| 5.2.7 可溶性糖的提取和含量测定 |
| 5.3 结果与分析 |
| 5.4 讨论 |
| 第六章 结论与展望 |
| 6.1 结论 |
| 6.2 展望 |
| 参考文献 |
| 附录 |
| 致谢 |
| 硕士期间发表文章及参加科研项目情况 |
（10）不同药剂对根肿病的防效及土壤理化和微生物的变化（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第一章 文献综述 |
| 1 十字花科根肿病研究进展 |
| 1.1 根肿病的发生症状 |
| 1.2 根肿菌的寄主范围 |
| 1.3 病原菌的分类及形态 |
| 1.4 根肿菌及其传播途径 |
| 1.5 根肿病发病条件 |
| 1.6 根肿病的防治现状及趋势 |
| 2 选题的目的意义、研究内容、技术路线 |
| 2.1 选题的目的意义 |
| 2.2 研究内容 |
| 2.3 技术路线 |
| 第二章 根肿病药剂筛选 |
| 1、不同药剂处理对根肿病休眠孢子萌发的影响 |
| 1.1 实验材料 |
| 1.2 实验方法 |
| 1.3 结果与分析 |
| 1.4 讨论 |
| 2、根肿病防治药剂室内浓度筛选 |
| 2.1 实验材料 |
| 2.1.1 供试菌源 |
| 2.1.2 实验地点 |
| 2.1.3 供试药剂 |
| 2.1.4 实验仪器 |
| 2.2 实验方法 |
| 2.3 结果与分析 |
| 2.4 讨论 |
| 3、不同药剂对根肿病的田间防治效果 |
| 3.1 实验材料 |
| 3.1.1 供试植物材料 |
| 3.1.2 实验地点 |
| 3.2 实验方法 |
| 3.2.1 播种及施药 |
| 3.2.2 产量指标的调查 |
| 3.3 结果与分析 |
| 3.1.1 星罗村唐昌镇田间调查结果与分析 |
| 3.1.2 什邡市南泉镇瑞虹村5 组田间调查结果与分析 |
| 3.4 讨论 |
| 第三章 土壤理化性质的变化 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 实验材料 |
| 1.1.1 供试材料 |
| 1.1.2 实验地点 |
| 1.1.3 供试试剂 |
| 1.3.1.1 检测磷所需试剂 |
| 1.3.1.2 检测镁、钙所需试剂 |
| 1.2 实验方法 |
| 1.2.1 检测磷实验方法(钒钼黄比色法) |
| 1.2.2 检测钙、镁实验方法(原子吸收分光光度法) |
| 1.2.3 土壤pH的检测 |
| 1.3 计算方法 |
| 1.3.1 计算全磷方法 |
| 1.3.2 计算钙、镁方法 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 土壤元素的变化 |
| 2.2 室内实验PH值的变化 |
| 2.3 星罗村田间实验PH值的变化 |
| 2.4 什邡市南泉镇瑞虹村田间实验PH值的变化 |
| 3 讨论 |
| 第四章 土壤微生物数量和种类的检测 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 实验材料 |
| 1.1.1 供试材料 |
| 1.1.2 实验地点 |
| 1.2 实验方法 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 细菌分析 |
| 2.2 真菌分析 |
| 3 讨论 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 作者简介 |
四、十字花科作物根肿病药效试验初报（论文参考文献）
- [1]甘蓝抗根肿病种质资源鉴定及抗性相关基因挖掘[D]. 王神云. 扬州大学, 2021(02)
- [2]影响榨菜根肿病发病的关键因子及生防菌的控病作用研究[D]. 刘烈花. 西南大学, 2021(01)
- [3]十字花科根肿病综合防控技术研究[D]. 王思琦. 沈阳农业大学, 2021
- [4]十字花科蔬菜根肿病生防菌的筛选及应用[D]. 张思雨. 天津农学院, 2020(07)
- [5]大白菜抗根肿病基因BraA.PB.1.2与BraA.Pb.8.2的初步定位[D]. 田洪银. 沈阳农业大学, 2020(08)
- [6]大白菜根肿病抗性基因BrA.Pb8.3的初步定位[D]. 郭玲玲. 沈阳农业大学, 2020(08)
- [7]青花菜主要病虫害化学农药协同增效及应用技术研究[D]. 张劭兵. 安徽农业大学, 2019(06)
- [8]芸薹根肿菌分子检测与田间时空动态分析[D]. 关格格. 沈阳农业大学, 2019
- [9]甘蓝抗根肿病的指标体系构建[D]. 张炜. 西南大学, 2019(01)
- [10]不同药剂对根肿病的防效及土壤理化和微生物的变化[D]. 赵倩. 四川农业大学, 2019(01)