论文摘要
黄病毒是黄病毒科黄病毒属病毒的统称,为单链正义RNA病毒,是一类重要的引起人类疾病的虫媒病毒,主要包括西尼罗病毒、黄热病毒、登革病毒、寨卡病毒、日本脑炎病毒和蜱传脑炎病毒等,在世界范围内分布广泛,严重危害人类的生命健康。目前,大多数黄病毒缺乏有效的疫苗和抗病毒药物,并且蚊虫和蜱虫是黄病毒的主要传播媒介,进一步增大了控制病毒传播及疾病预防的难度。因此,建立有效的抗病毒药物筛选平台、研究黄病毒的致病机制具有重要意义。鄂木斯克出血热病毒(Omsk hemorrhagic fever virus,OHFV)是一种由蜱虫传播的生物安全四级(Biosafety level 4,BSL4)的病原体,主要引起发热、头痛、咳嗽、肌痛、出血等症状,有时出现脑膜炎并伴有神经系统损害,严重威胁人类健康。在生物安全等级四级实验室进行病毒学操作极大限制了OHFV的研究。目前,针对OHFV病毒的感染,尚无商业化的疫苗和抗病毒药物。在本论文中,利用OHFV感染性克隆,我们构建了NS1基因缺失的OHFV复制缺陷病毒(OHFV-?NS1)和复制缺陷的Gaussia荧光素酶(Gluc)报告病毒(OHFV-?NS1-Gluc)。这两种缺陷病毒只能在稳定表达NS1的BHK-21细胞系(BHK-21NS1)中复制增殖,在野生型的BHK-21细胞中不能产毒,同时Gluc报告基因的表达可有效表征病毒的复制。利用OHFV-?NS1-Gluc报告病毒,我们建立了基于96孔板的高通量药物筛选方法。OHFV复制缺陷病毒的成功构建为我们在BSL2实验室研究OHFV的复制机制、致病机理及高通量药物筛选提供了平台。sfRNA(subgenomic flavivirus RNA,sfRNA)是近年新发现的黄病毒重要的毒力因子之一,sfRNA是由宿主5?-3?核酸外切酶XRN1不完全切割病毒基因组RNA形成的非编码RNA。sfRNA可参与细胞内的I型干扰素反应和RNAi等,影响病毒的致病性。前期文献表明,sfRNA的产生是由3?UTR保守的茎环结构(SLII/SLIV)和哑铃结构(DB1/DB2)阻止XRN1的切割而形成。本论文研究发现了一组新的位于黄病毒3?UTR的二级结构可影响sfRNA的产生。我们发现实验室已有的两株西尼罗病毒(WNV和WNVa)对小鼠的致病性与sfRNA产生具有相关性。通过全基因组序列比对、感染性克隆突变验证、小鼠毒力实验以及sfRNA检测等一系列实验,证明病毒基因组的10577位点是影响sfRNA1产生及病毒致病性的关键位点。分析发现10577位于3?UTR的RCS3区,我们利用突变的重组病毒证明了RCS3序列的缺失影响病毒sfRNA1的产生。RCS3环区及茎区的一系列突变表明:RCS3的茎区配对是sfRNA1产生所必需的,而环区序列不是sfRNA1产生的必要条件。通过黄病毒3?UTR序列分析,我们发现CS序列在不同黄病毒中均比较保守,继而验证了WNV CS3、RCS2和CS2序列缺失的病毒分别影响sfRNA2/3/4条带的产生。通过多位点突变,我们也验证了WNV CS3的茎区配对是sfRNA2产生的必要条件。我们在ZIKV及DENV2病毒中也进一步验证了RCS3和CS3保守结构影响sfRNA的产生。我们首次系统验证了黄病毒属不同种病毒的CS保守序列对sfRNA的产生有影响,为黄病毒减毒疫苗的研发和治疗提供了新的位点。
论文目录
摘要Abstract第一章 引言 1.1 黄病毒的生物学特性 1.1.1 黄病毒分类及流行概况 1.1.2 黄病毒形态、结构及理化性质 1.1.3 黄病毒的基因组结构和功能 1.1.4 黄病毒的蛋白结构和功能 1.1.4.1 黄病毒结构蛋白功能介绍 1.1.4.2 非结构蛋白功能介绍 1.1.5 黄病毒的生命周期 1.2 假病毒系统的研究进展 1.2.1 复制子系统 1.2.2 病毒样颗粒系统 1.2.3 复制缺陷病毒系统 1.3 亚基因组RNA的研究进展 1.3.1 黄病毒亚基因组RNA的起源 1.3.2 亚基因组RNA的产生机制 1.3.2.1 核酸外切酶切割 1.3.2.2 sfRNA产生所需的RNA高级结构 1.3.3 亚基因组RNA与病毒复制 1.3.4 亚基因组RNA与RNAi反应 1.3.5 亚基因组RNA抑制I型IFN反应 1.3.6 亚基因组RNA与病毒致病性 1.4 本论文的主要内容 1.4.1 选题的背景和意义 1.4.2 本论文所要解决的关键科学问题 1.4.3 本论文的结论第二章 鄂木斯克出血热复制缺陷病毒的构建和应用 2.1 实验材料 2.1.1 实验仪器 2.1.2 菌株、细胞系、抗体和药物 2.1.2.1 菌株 2.1.2.2 细胞系 2.1.2.3 抗体 2.1.2.4 药物 2.1.3 化学试剂和试剂盒 2.1.3.1 化学试剂 2.1.3.2 试剂盒 2.2 实验方法 2.2.1 DNA片段的琼脂糖凝胶回收 2.2.2 质粒的构建 2.2.2.1 OHFV-?NS1及OHFV-?NS1-Gluc克隆构建 2.2.2.2 p BABEpuro-OHFV-NS1克隆的构建 2.2.3 质粒的提取(大量) 2.2.4 质粒的线性化和酚氯仿抽提 2.2.5 RNA的体外转录 2.2.6 细胞培养 2.2.7 DNA转染BHK-21 细胞 2.2.8 RNA脂质体转染细胞(BHK-21 和BHK-21NS1) 2.2.9 间接免疫荧光实验 (Indirect immunofluorescence assay, IFA) 2.2.10 免疫印迹实验(Western blotting,WB) 2.2.11 稳定表达NS1的BHK-21 细胞系的筛选 2.2.11.1 表达有NS1蛋白的逆转录病毒的包装 2.2.11.2 逆转录病毒感染 2.2.11.3 稳定表达NS1蛋白的细胞系筛选 2.2.12 缺陷病毒滴度测定 2.2.13 缺陷病毒生长曲线测定 2.2.14 Gluc信号值的测定 2.2.15 细胞总RNA的提取 2.2.16 逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR) 2.2.17 抗病毒药物实验 2.2.18 高通量药物筛选实验条件的优化 2.3 实验结果 2.3.1 NS1表达质粒可反式互补复制缺陷的OHFV-?NS1 2.3.2 稳定表达NS1细胞系的筛选及验证 2.3.3 OHFV-?NS1缺陷病毒的特征 2.3.4 OHFV-?NS1缺陷病毒稳定性和安全性鉴定 2.3.5 OHFV-?NS1-Gluc缺陷病毒的产生及特征鉴定 2.3.6 OHFV-?NS1-Gluc缺陷病毒可用于高通量抗病毒药物的筛选 2.4 讨论第三章 黄病毒 3¢UTR重复序列影响sfRNA的产生 3.1 实验材料 3.1.1 实验仪器 3.1.2 菌株、细胞系、病毒 3.1.2.1 菌株 3.1.2.2 细胞系 3.1.2.3 病毒 3.1.3 化学试剂和试剂盒 3.1.3.1 化学试剂 3.1.3.2 试剂盒 3.2 实验方法 3.2.1 DNA片段的回收 3.2.2 质粒的构建 3.2.3 质粒的大量提取、线性化及酚氯仿抽提 3.2.4 T7启动子感染性克隆RNA的体外转录及转染产毒 3.2.5 CMV启动子感染性克隆DNA转染产毒 3.2.6 细胞培养 3.2.7 病毒感染、噬斑实验及生长曲线测定 3.2.8 细胞总RNA的提取 3.2.9 Northern Blot探针标记 3.2.10 Northern Blot实验 3.2.11 sfRNA测序反应 3.2.12 小鼠实验 3.3 实验结果 3.3.1 弱毒株WNVa减弱小鼠致病性及sfRNA产量 3.3.2 WNV病毒 3'UTR-10577 单个核苷酸的突变影响病毒致病性及sfRNA产生 3.3.3 WNV RCS3序列缺失影响sfRNA1的形成 3.3.4 WNV RCS3茎区结构(P4)是sfRNA1产生必需 3.3.5 WNV RCS3环区序列(L4)不影响sfRNA1产生 3.3.6 WNV CS3/RCS2/CS2是sfRNA2/3/4 产生必需 3.3.7 WNV CS3茎区结构是sfRNA2产生必需 3.3.8 ZIKV CS保守序列影响sfRNA产生 3.3.9 DENV2 CS保守序列影响sfRNA产生 3.4 讨论第四章 总结与展望 4.1 总结 4.2 展望参考文献附录A 缩略词表附录B 图表清单致谢作者简历及攻读学位期间发表的学术论文与研究成果
文章来源
类型: 博士论文
作者: 张秋艳
导师: 张波
关键词: 黄病毒,鄂木斯克出血热病毒,复制缺陷病毒,保守序列
来源: 中国科学院大学(中国科学院武汉病毒研究所)
年度: 2019
分类: 基础科学,医药卫生科技
专业: 生物学,基础医学
单位: 中国科学院大学(中国科学院武汉病毒研究所)
基金: 国家重大传染病防治科技重大专项(2018ZX10734404-010),国家重点研发项目(2018YFA0507201)
分类号: R373
总页数: 130
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- [1].单纯疱疹病毒疫苗的研究现状[J]. 中华男科学杂志 2009(01)
标签:黄病毒论文; 鄂木斯克出血热病毒论文; 复制缺陷病毒论文; 保守序列论文;