蜕皮甾酮论文_朱裕林,戴浩志,桑冉,孔令提,许健

导读:本文包含了蜕皮甾酮论文开题报告文献综述、选题提纲参考文献及外文文献翻译,主要关键词:牛膝,炎症,升麻,细胞,平滑肌,内皮,羟基。

蜕皮甾酮论文文献综述

朱裕林,戴浩志,桑冉,孔令提,许健[1](2019)在《HPLC分析大鼠血浆中β-蜕皮甾酮浓度及其初步药代动力学研究》一文中研究指出目的采用HPLC建立大鼠血浆中β-蜕皮甾酮浓度的测定方法,并探究β-蜕皮甾酮在大鼠体内的初步药代动力学情况。方法以安替比林为内标,色谱柱Unitary C18(4. 6 mm×150 mm,5μm),流动相为乙腈-0. 1%甲酸(16∶84),流速1. 0 ml/min,柱温30℃,进样量20μl,紫外检测波长为263 nm,建立大鼠血浆中β-蜕皮甾酮的分析方法。大鼠灌胃β-蜕皮甾酮10 mg/kg,测定不同时间点β-蜕皮甾酮血药浓度。运用DAS 2. 1软件进行数据分析,得出其主要药动学参数。结果大鼠血浆中β-蜕皮甾酮在0. 25-100. 00μg/ml浓度范围内线性关系良好(Y=0. 841X-0. 011 4,R~2=0. 999 0),定量下限0. 25μg/ml,日内和日间精密度、稳定性RSD均小于10%,低、中、高浓度(0. 50,20. 00,75. 00μg/ml)血浆样品回收率分别为(89. 72±5. 71)%,(90. 60±5. 01)%,(97. 69±1. 44)%,符合生物样品分析要求。主要药动学参数峰浓度Cmax为(66. 41±4. 65)μg/ml,消除半衰期t1/2(β)为(1. 79±0. 11) h,总清除率CL为(0. 40±0. 02) L/(h·kg),0-24 h药时曲线下面积AUC_(0-24)为(252. 30±11. 84)μg/(ml·h)。结论本研究建立的体内β-蜕皮甾酮HPLC检测方法操作快速、线性良好、准确度高,可应用于β-蜕皮甾酮在大鼠体内的药代动力学研究。(本文来源于《山西医科大学学报》期刊2019年11期)

欧阳文轩[2](2019)在《HPLC法测定通塞脉片中β-蜕皮甾酮含量》一文中研究指出目的:建立通塞脉片中β-蜕皮甾酮含量测定方法,通过测定β-蜕皮甾酮含量进一步提高通塞脉片质量标准。方法:采用高效液相色谱法(HPLC法)测定,选用WondasilC_(18)(4.6 mm×250 mm,5μm)岛津色谱柱,流动相为乙腈-水-甲酸(15:85:0.1),检测波长选用250 nm,流速为1.0 mL/min,柱温为35℃,进样量为10μL。结果:通过此方法通塞脉片中β-蜕皮甾酮能得到较好分离,β-蜕皮甾酮线性范围为0.5034~1.1075μg,r=0.999 8(n=6),得到平均回收率为96.86%,RSD值为1.14%。结论:用高效液相色谱法进行测定操作简单快捷,实验结果准确性高、重复性好,可用于通塞脉片中β-蜕皮甾酮的含量测定。(本文来源于《亚太传统医药》期刊2019年09期)

吴佳,匡艳辉,刘湘丹[3](2019)在《不同采收期广升麻产量及其蜕皮甾酮含量动态变化研究》一文中研究指出目的研究不同采收期广升麻产量及其蜕皮甾酮的含量,为广升麻标准化栽培过程中采收期的确定提供依据。方法于不同采收期采集广升麻植株,称重法测定其根质量;HPLC测定根中蜕皮甾酮含量,色谱柱为ZORBAX Eclipse XDB-C18(250 mm×4.6 mm,5μm),流动相为甲醇-水(45︰55,V/V),流速1.0 mL/min,检测波长248 nm,柱温30℃,进样量10μL。结果不同采收期广升麻植株根质量和根中蜕皮甾酮含量均呈动态变化。根质量在10月下旬达到最大值,之后基本稳定;蜕皮甾酮含量于11月上旬达到最高,其后稍有下降。结论综合根产量、蜕皮甾酮含量和广升麻植株物候期,确定广升麻根的最佳采收期为11月上、中旬。(本文来源于《中国中医药信息杂志》期刊2019年10期)

戴浩志,朱裕林,陈卫东[4](2019)在《在体单向灌流法研究β-蜕皮甾酮大鼠在体肠吸收特性》一文中研究指出目的考察β-蜕皮甾酮的肠道吸收特性,探究β-蜕皮甾酮生物利用度低的原因。方法采用大鼠在体单向肠灌流模型,运用HPLC法测定药物浓度。分别考察小肠吸收部位(十二指肠、空肠、回肠、结肠),药物浓度,灌流液pH值,肠道菌群对β-蜕皮甾酮吸收的影响。结果β-蜕皮甾酮在不同肠段的吸收速率常数(K_a)由高到低依次为回肠、结肠、空肠、十二指肠;以β-蜕皮甾酮浓度为50、100、200μg·mL~(-1)的含药缓冲液在空肠进行吸收实验,K_a和小肠有效渗透系数(P_(eff))差异无统计学意义;药物的吸收程度在空肠随pH值升高而增加;大鼠肠道菌群失衡会干扰β-蜕皮甾酮的吸收。结论β-蜕皮甾酮在各个肠段均有吸收,但在肠道下部吸收较好;吸收机制为被动扩散;药物在碱性环境下吸收较好;肠道菌群对β-蜕皮甾酮吸收有显着影响。(本文来源于《中南药学》期刊2019年05期)

杨柳,姜海,苏晓琳,颜美玲,邢绪东[5](2019)在《HPLC-DAD-ELSD法同时测定牛膝中β-蜕皮甾酮、人参皂苷R_0、竹节参皂苷Ⅳa的含量》一文中研究指出目的:采用高效液相色谱-二极管阵列检测器-蒸发光散射检测器(HPLC-DAD-ELSD)法同时测定牛膝中3种化合物β-蜕皮甾酮、人参皂苷R_0、竹节参皂苷Ⅳa的含量。方法:采用Agilent 5 TC-C_(18)(4.6 mm×250 mm,5μm)色谱柱,流动相为乙腈-0.08%甲酸(A),水-2.5%异丙醇-0.08%甲酸(B)不同比例进行梯度洗脱;流速为0.9 mL/min,运行时间80 min,β-蜕皮甾酮采用DAD进行检测,检测波长为248 nm;人参皂苷R_0和竹节参皂苷Ⅳa采用ELSD进行检测,漂移管温度为110℃,载气流速3.2 L/min。结果:β-蜕皮甾酮在0.001 9~0.096 3 mg/mL浓度范围内浓度与峰面积间呈良好的线性关系(r~2=0.999 9);人参皂苷R_0、竹节参皂苷Ⅳa分别在0.002 2~0.469 5 mg/mL和0.004 7~0.483 0 mg/mL浓度范围内浓度的对数与峰面积的对数间呈良好的线性关系(r~2=0.999 5,r~2=0.999 4)。牛膝中叁种化合物(β-蜕皮甾酮、人参皂苷R_0、竹节参皂苷Ⅳa)的平均加样回收率分别为99.29%(RSD为2.14%)、99.13%(RSD为2.04%)和98.30%(RSD为2.11%)。结论:本研究所建立的方法简便,快速,且稳定性、精密度、重复性良好,适用于牛膝中甾酮类和皂苷类成分的同时测定,也可用于牛膝药材的质量控制。(本文来源于《中医药信息》期刊2019年03期)

魏元基,李峻昊,王利波,王成龙,戴薇薇[6](2019)在《牛膝活性成分β-蜕皮甾酮通过Akt信号干预地塞米松诱导的骨细胞凋亡》一文中研究指出目的探讨牛膝活性成分β-蜕皮甾酮对地塞米松诱导MLO-Y4骨样细胞凋亡的抑制作用及其可能的作用机制。方法 10μmol/L地塞米松(dexamethasone,Dex)作用于MLO-Y4骨样细胞,以PI3K/Akt抑制剂LY294002为对照,β-蜕皮甾酮(β-Ecdysone,β-Ecd)干预,分为6组:①正常组;②10μmol/L Dex模型组;③10μmol/L Dex+10μmol/Lβ-Ecd组;④10μmol/L Dex+10μmol/Lβ-Ecd+50μmol/L LY294002组;⑤10μmol/L Dex+0.1μmol/Lβ-Ecd组;⑥10μmol/L Dex+0.1μmol/Lβ-Ecd+50μmol/L LY294002组。作用48 h后,Annexin V-FITC/PI法检测细胞早期凋亡率,Western-Blot检测Akt1、Phospho-Akt(Thr308)、Connexin43(CX43)、Caspase9、Bad、Phospho-Bad蛋白表达。结果与正常组比较,Dex组细胞凋亡率升高,Caspase9、Bad蛋白表达升高,Akt1、CX43蛋白表达降低;与造模组比较,β-Ecd减弱Caspase9蛋白表达,使Akt1、CX43蛋白表达增强;LY294002使Akt1、CX43蛋白表达明显减弱,而β-Ecd并不能使LY294002降低的Akt1蛋白表达升高。结论 0.1μmol/L、10μmol/Lβ-蜕皮甾酮可能通过Akt信号途径干预地塞米松诱导的骨细胞凋亡。(本文来源于《中国骨质疏松杂志》期刊2019年03期)

胡惠清,李静,方坤,卢彩红,吕保先[7](2019)在《蜕皮甾酮抑制肿瘤坏死因子α诱导的HaCaT细胞的炎症因子的产生》一文中研究指出目的蜕皮甾酮(Ecdysterone,EDS)是来源于中药牛膝的一类甾酮类化合物。笔者检测了蜕皮甾酮对肿瘤坏死因子(TNF)-α刺激后HaCaT角质形成细胞的炎症因子产生的影响及相关可能机制。方法采用CCK-8细胞活力测定法检测了蜕皮甾酮对细胞增殖的影响,研究蜕采用酶联免疫吸附试验(ELISA)检测了蜕皮甾酮对TNF-α刺激后HaCaT炎症因子产生的影响;采用Western印迹法对NF-κB通路和MAPK通路的相关蛋白进行了检测;采用免疫荧光法检测了TNF-α刺激后HaCaT细胞核因子(NF)-κB蛋白核转位。结果在所选浓度内,蜕皮甾酮对HaCaT细胞增殖无明显影响;蜕皮甾酮抑制了TNF-α诱导的HaCaT细胞胸腺和活化调节趋化因子(TARC),人巨噬细胞来源的趋化因子(MDC/CCL22),调节激活正常T-细胞表达分泌因子(RANTES/CCL5),白细胞介素(IL)-8的表达。蜕皮甾酮能剂量依赖性降低TNF-α诱导的HaCaT细胞胞核内P65的水平,抑制P65和核转位,提高胞浆内IκB的水平;蜕皮甾酮能剂量依赖性抑制TNF-α诱导的HaCaT细胞MAPK通路中P38,ERK,JNK蛋白的磷酸化。结论蜕皮甾酮可能通过调节NF-κB通路和MAPK通路的活化抑制了TNF-α刺激后HaCaT炎症因子产生。这为蜕皮甾酮应用于炎症性皮肤疾病提供了一定的依据。(本文来源于《中国中西医结合皮肤性病学杂志》期刊2019年01期)

汤样华,辛大伟,李国松,岳振双,曾林如[8](2019)在《β-蜕皮甾酮对激素性骨质疏松大鼠血清骨代谢指标及骨密度的影响》一文中研究指出目的:观察β-蜕皮甾酮(β-Ecd)对糖皮质激素性骨质疏松大鼠血清骨代谢指标及骨密度(BMD)的影响。方法:30只雄性Wistar大鼠随机分为5组:对照组、泼尼松龙(Pred)组、Pred+β-Ecd(5 mg/kg)组、Pred+β-Ecd(10 mg/kg)组、Pred+阿仑膦酸(ALN)(3 mg/kg)组,每组6只。采用全自动生化分析仪检测各组大鼠血清钙、磷浓度、抗酒石酸磷酸酶(TRAP)和碱性磷酸酶(ALP)活性。应用Micro-CT测定各组大鼠第5 腰椎骨结构和BMD。结果:血清骨代谢指标检测结果显示,与对照组比较Pred组血清钙、磷水平显着升高,血清ALP活性和TRAP活性升高。与Pred组比,Pred+ALN组和Pred+β-Ecd(10 mg/kg)组血清钙、磷水平降低,血清ALP活性和TRAP活性降低。而Pred+β-Ecd(5 mg/kg)组血清ALP活性和TRAP水平降低,而对钙、磷水平无明显影响。骨结构和BMD Micro-CT检测结果显示,在所有Pred处理的大鼠中均观察到不同程度的骨丢失。在Pred组中第5腰椎的BMD值明显低于对照组。Micro-CT评估显示Pred组骨表面积和组织体积的比值(BS/TV)较对照组降低。叁维模型分析显示,Pred组骨小梁数量(Tb.N)、骨体积分数(BV/TV)均明显低于对照组,并且骨小梁分离度(Tb.Sp)明显增加,但骨小梁厚度(Tb.Th)和结构模型指数(SMI)未表现出显着差异。与Pred组比,Pred+ALN组和Pred+β-Ecd(10 mg/kg)组BMD、BS/TV、BV/TV和Tb.N水平显着增加,而Tb.Sp和SMI降低。与Pred组相比,Pred+β-Ecd(5 mg/kg)组中BMD、BS/TV、BV/TV和Tb.N水平显着增高,而Tb.Th和Tb.Sp水平降低。结论:β-Ecd可能通过抑制骨丢失、改善骨代谢的作用机制,治疗糖皮质激素性骨质疏松症。(本文来源于《温州医科大学学报》期刊2019年02期)

朱汉民[9](2018)在《蜕皮甾酮在犬皮肤创伤愈合过程中对相关炎性及生长因子的影响》一文中研究指出蜕皮甾酮作为昆虫生长代谢调节类的激素,具有调节免疫,改善蛋白质的合成速度,调节内皮细胞的增殖,参与损伤细胞增长,增进皮肤创伤愈合等一系列功效。创伤的愈合是被多种细胞因子调节的极其繁琐的一种生理反应,诸多具有生物活性的物质在创伤愈合的整个反应过程中都发挥着极其重要的调节功能,而这些细胞因子在创伤修复过程中的表达和创伤发生的时间有着密切联系。本次实验采用Wistar大鼠作为主要实验动物,研究探讨蜕皮甾酮在皮肤创伤愈合的过程中发挥的具体功能,同时以犬作为实验对象,验证蜕皮甾酮在动物皮肤受到创伤后整个修复过程中的促进效果。实次验把60只Wistar大鼠采用随机分组方式随机分为四组,通过直观的对创伤愈合率进行检测,对创伤部位皮肤按照一定间隔日期制作组织切片并进行病理组织切片观察,采用酶联免疫法测定血清中的炎性因子白细胞介素-1β、白细胞介素6和肿瘤细胞坏死因子的含量及免疫组化法半定量创伤愈合相关细胞因子血管内皮生长因子、α-平滑肌肌动蛋白、成纤维细胞生长因子的含量,研究了蜕皮甾酮在对损伤修复的全部程序中发挥的功能及其对炎性反应阶段和增殖阶段这两个重要时期的的影响。把4只雄性犬每只记为一组,为使其具有统计学意义,在每只犬背部造5个皮肤切除创,通过对实验犬创伤愈合率的检测来印证蜕皮甾酮的促创伤愈合作用。实验结果显示:对大鼠的创伤愈合检测实验结果表明,在大鼠创伤发生后的第3d,各组的平均愈合程度模型组和溶媒组已然明显低于蜕皮甾酮组和阳性药组(P<0.01;P<0.05),并且之后的整个观察阶段,后者创伤愈合率一直明显高于前者(P<0.05)。病理切片结果显示,第3d切片中炎性细胞量蜕皮甾酮组和阳性药组已开始低于模型组和溶媒组,且蜕皮甾酮组和阳性药组的血管和肉芽组织的开始增殖;第7d时,蜕皮甾酮组和阳性药组炎性细胞浸润变得更少,主要以成纤维细胞的再生为主,且逐渐排列有序,而模型组和溶媒组中仍存在大量炎性细胞浸润,成纤维细胞含量较低,少见有新生血管;第14d,蜕皮甾酮组和阳性药组表皮结构已重生完成,可见皮肤构造明显,但模型组和溶媒组依然存在一定数量的肉芽组织及再生血管没有完全退化,成纤维细胞也呈参差不齐的状态排列。酶联免疫法测定炎性因子的实验结果显示,蜕皮甾酮组小鼠的血清中炎性因子IL-1β、IL-6和TNF-α的含量明显低于模型组和溶媒组(P<0.01)。免疫组化结果显示,蜕皮甾酮组所测叁种炎症因子的平均累计光密度均显着高于模型组和溶媒组(P<0.01)。犬皮肤创伤愈合实验结果显示,模型组的表皮再植完成时间要远长于阳性药组和蜕皮甾酮组。研究结果表明蜕皮甾酮能明显减轻创伤组织的炎症反应,并通过参与促进血管再生和创伤收缩等过程来实现对大鼠皮肤创伤后愈合的促进。另外,蜕皮甾酮能够在一定范围内对犬皮肤损伤后的修复起到促进作用。(本文来源于《东北农业大学》期刊2018-12-01)

胡军,张彦海,张佳,潘娜,迟丽屹[10](2018)在《20-羟基蜕皮甾酮对大鼠全脑缺血再灌注后海马神经元损伤和炎症反应的影响》一文中研究指出目的:观察20-羟基蜕皮甾酮对全脑缺血再灌注后SD大鼠海马神经元和认知功能的保护作用,并探讨其相关机制。方法:采用四血管闭塞法建立SD大鼠全脑缺血再灌注模型,脑电图和脑组织Nissl染色评估模型的可靠性。将实验动物分为假手术组,缺血再灌注组和缺血再灌注+20-羟基蜕皮甾酮组。TUNEL染色观察海马神经元凋亡,Morris水迷宫实验评价大鼠的认知功能,酶联免疫法测定缺血再灌注后3-24小时大鼠血清中白细胞介素-1β(IL-1β)和肿瘤坏死因子α(TNF-α)的浓度。结果:全脑缺血再灌注后大鼠海马神经元凋亡率从4.50±1.90%上升至72.90±8.40%(p<0.01),给予20和40 mg/kg 20-羟基蜕皮甾酮干预,大鼠海马神经元凋亡率分别下降至51.40±8.60%(p<0.05)和42.70±6.80%(p<0.01)。与假手术组相比,全脑缺血再灌注后大鼠在Morris水迷宫定位航行试验中逃避潜伏期明显延长(p<0.01),在空间探索试验中目标象限停留时间和穿越目标象限次数明显减少(p<0.01),而20-羟基蜕皮甾酮显着抑制上述变化,改善大鼠的认知功能。缺血再灌注后3-24小时,大鼠血清中IL-1β和TNFα浓度较假手术组显著升高,20-羟基蜕皮甾酮能抑制上述各时间点大鼠血清中IL-1β和TNFα浓度的升高。结论:20-羟基蜕皮甾酮对全脑缺血再灌注后大鼠海马神经元和认知功能有显着保护作用,抑制缺血再灌注后的炎症反应是其保护机制之一。(本文来源于《现代生物医学进展》期刊2018年20期)

蜕皮甾酮论文开题报告

(1)论文研究背景及目的

此处内容要求:

首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景,再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题,并提出你的论文准备的观点或解决方法。

写法范例:

目的:建立通塞脉片中β-蜕皮甾酮含量测定方法,通过测定β-蜕皮甾酮含量进一步提高通塞脉片质量标准。方法:采用高效液相色谱法(HPLC法)测定,选用WondasilC_(18)(4.6 mm×250 mm,5μm)岛津色谱柱,流动相为乙腈-水-甲酸(15:85:0.1),检测波长选用250 nm,流速为1.0 mL/min,柱温为35℃,进样量为10μL。结果:通过此方法通塞脉片中β-蜕皮甾酮能得到较好分离,β-蜕皮甾酮线性范围为0.5034~1.1075μg,r=0.999 8(n=6),得到平均回收率为96.86%,RSD值为1.14%。结论:用高效液相色谱法进行测定操作简单快捷,实验结果准确性高、重复性好,可用于通塞脉片中β-蜕皮甾酮的含量测定。

(2)本文研究方法

调查法:该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。

观察法:用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。

实验法:通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。

文献研究法:通过调查文献来获得资料,从而全面的、正确的了解掌握研究方法。

实证研究法:依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。

定性分析法:对研究对象进行“质”的方面的研究,这个方法需要计算的数据较少。

定量分析法:通过具体的数字,使人们对研究对象的认识进一步精确化。

跨学科研究法:运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。

功能分析法:这是社会科学用来分析社会现象的一种方法,从某一功能出发研究多个方面的影响。

模拟法:通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。

蜕皮甾酮论文参考文献

[1].朱裕林,戴浩志,桑冉,孔令提,许健.HPLC分析大鼠血浆中β-蜕皮甾酮浓度及其初步药代动力学研究[J].山西医科大学学报.2019

[2].欧阳文轩.HPLC法测定通塞脉片中β-蜕皮甾酮含量[J].亚太传统医药.2019

[3].吴佳,匡艳辉,刘湘丹.不同采收期广升麻产量及其蜕皮甾酮含量动态变化研究[J].中国中医药信息杂志.2019

[4].戴浩志,朱裕林,陈卫东.在体单向灌流法研究β-蜕皮甾酮大鼠在体肠吸收特性[J].中南药学.2019

[5].杨柳,姜海,苏晓琳,颜美玲,邢绪东.HPLC-DAD-ELSD法同时测定牛膝中β-蜕皮甾酮、人参皂苷R_0、竹节参皂苷Ⅳa的含量[J].中医药信息.2019

[6].魏元基,李峻昊,王利波,王成龙,戴薇薇.牛膝活性成分β-蜕皮甾酮通过Akt信号干预地塞米松诱导的骨细胞凋亡[J].中国骨质疏松杂志.2019

[7].胡惠清,李静,方坤,卢彩红,吕保先.蜕皮甾酮抑制肿瘤坏死因子α诱导的HaCaT细胞的炎症因子的产生[J].中国中西医结合皮肤性病学杂志.2019

[8].汤样华,辛大伟,李国松,岳振双,曾林如.β-蜕皮甾酮对激素性骨质疏松大鼠血清骨代谢指标及骨密度的影响[J].温州医科大学学报.2019

[9].朱汉民.蜕皮甾酮在犬皮肤创伤愈合过程中对相关炎性及生长因子的影响[D].东北农业大学.2018

[10].胡军,张彦海,张佳,潘娜,迟丽屹.20-羟基蜕皮甾酮对大鼠全脑缺血再灌注后海马神经元损伤和炎症反应的影响[J].现代生物医学进展.2018

论文知识图

20-羟基蜕皮甾酮的资源植物露水...HPLC法测定倒扣草中蜕皮甾酮的含...4 蜕皮甾酮组大鼠肝组织病理学改...20-羟基蜕皮甾酮的立体化学结构免疫细胞化学法检测蜕皮甾酮处...蜕皮甾酮对照品的HPLC图

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