导读:本文包含了睾丸酮丛毛单胞菌论文开题报告文献综述、选题提纲参考文献及外文文献翻译，主要关键词:睾丸酮,胞菌,基因,多相,废水,链式反应,鉴定。
睾丸酮丛毛单胞菌论文文献综述
詹建举,张升,朱来萍,马粉,姚俊[1]（2019）在《国内猪源睾丸酮丛毛单胞菌的分离与鉴定》一文中研究指出为查明2018年8月云南省曲靖市富源县某规模化猪场发生母猪产死胎、弱仔猪的病因,本试验采集弱仔猪内脏组织病料进行病原菌的分离培养、生化鉴定、16S rRNA扩增、药敏试验及致病性试验。结果显示,从弱仔猪大脑组织内分离培养出1株菌落形态呈圆形、半透明的革兰氏阴性短杆菌。生化鉴定结果显示,衣康酸盐同化(ITA)、辛二酸盐同化(SUB)、乙酸盐(ACE)、DL-乳酸盐同化(LAT)、丙酸盐同化(PROP)、3-羟基-丁酸盐(3OB)、脯氨酸(PRO)生化反应结果呈阳性;丙氨酸同化(ALA)、D-甘露醇(MAN)、D-葡萄糖(GLU)、癸酸盐(CAP)、丝氨酸同化(SER)等生化反应结果呈阴性,其16S rRNA序列与GenBank中丛毛单胞菌属(Comamonas sp.)EB172株(登录号:EU847238.1)的16S rRNA核苷酸序列同源性达99%。药敏试验结果显示,其对阿莫西林/克拉维酸、头孢噻吩、多黏菌素E、复方新诺明、大观霉素、呋喃妥因和多西环素敏感。致病性试验结果显示,以0.3 mL 9.3×10~8 CFU/mL的细菌悬液腹腔接种小鼠,72 h内共有7只死亡(7/12)。本试验结果表明,弱仔猪及流产胎儿存在睾丸酮丛毛单胞菌感染。(本文来源于《中国畜牧兽医》期刊2019年08期）
李泽琦[2]（2019）在《睾丸酮丛毛单胞菌中KAR的生物学功能及调控研究》一文中研究指出睾丸酮丛毛单胞菌(Comamonas testosteroni)是一种能够降解甾体类激素的革兰氏阴性细菌,因其在环境修复中有重要的生物学作用,国内外专家学者对其在菌体细胞与环境、菌体内代谢酶、菌体基因之间相互作用等进行了广泛研究。本文以睾丸酮丛毛单胞菌中短链脱氢酶KAR为研究对象,通过敲除菌株构建、甾体类激素诱导、高效液相色谱分析、质粒共转化等方法研究KAR基因对五种甾体类激素的降解作用,同时研究了睾丸酮丛毛单胞菌中叁种调控蛋白对KAR的生物学调控作用。实验结果表明:通过HPLC检测野生型和KAR敲除突变的睾丸酮丛毛单胞菌激素降解情况,激素分别诱导14小时后,各种激素的残留量呈现出明显的差距。其中突变菌株中睾丸酮残留量要高于野生型43%左右;雌酮残留量要高于野生型37%左右;孕酮雌酮残留量要高于野生型28%左右,而雌二醇和甲睾酮分别相差9%和8%。睾丸酮丛毛单胞菌KAR基因敲除以后其降解甾体类激素的能力受到了影响,影响程度上睾丸酮>雌酮>孕酮>雌二醇>甲睾酮。通过将含有叁种调控蛋白的重组质粒与含启动子的KAR重组质粒共转化到BL21菌株中,激素诱导后,ELSA检测结果为,LuxR与KAR的共转化菌中,KAR表达量明显上升;LysR与KAR的共转化菌中,KAR表达量下降;TetR与KAR的共转化菌中,KAR表达量无明显变化。本文实验结果对于进一步研究KAR酶在睾丸酮丛毛单胞菌中甾体类激素代谢作用及调控研究提供实验基础。(本文来源于《长春理工大学》期刊2019-06-01）
孙基丰[3]（2019）在《睾丸酮丛毛单胞菌中多种蛋白与SDRx的生物学作用》一文中研究指出睾丸酮丛毛单胞菌(Comamonas testosteroni)是一种能够降解类固醇的革兰氏阴性细菌,其代谢过程有20几种酶共同参与,近年关于睾丸酮丛毛单胞菌的生物修复作用及酶基因表达调控成为很多学者关注热点。SDRx短链脱氢酶是睾丸酮丛毛单胞菌中一种重要的激素降解酶。本文通过重组质粒的构建、酶联免疫吸附、高效液相色谱、质粒共转化等方法研究睾丸酮丛毛单胞菌中叁种调控蛋白(LysR、LuxR、TetR)对SDR的生物学作用。通过构建SDRx基因蛋白表达载体;利用大肠杆菌BL21(DE3)plysS菌株进行原核表达并纯化目的蛋白;利用纯化的蛋白制备小鼠多克隆抗体,利用ELISA的检测方法测定抗体效价并绘制标准曲线;利用基因同源重组及移码突变的原理构建睾丸酮丛毛单胞菌SDRx基因敲除突变株,并利用HPLC检测其在五种不同激素培养条件下,LB培养基中所剩余激素含量;将含有叁种调控蛋白的重组质粒与含有107启动子的SDRx重组质粒共转化到HB101菌株中,加激素诱导并提取共转化菌株总蛋白,利用ELISA的方法检测共转化菌株中SDRx的表达量。实验结果表明:成功克隆了SDRx基因并表达及纯化了SDRx蛋白,检测蛋白浓度达116.66μg/mL;成功制备效价较高的SDRx小鼠多克隆抗体,效价达到1:8000;SDRx基因影响睾丸酮丛毛单胞菌对激素的分解能力,其影响程度睾丸酮>孕酮>甲睾酮>雌酮>雌二醇;在睾丸酮丛毛单胞菌中LysR调控蛋白对SDRx脱氢酶几乎无作用。LuxR和TetR调控蛋白对SDRx脱氢酶起抑制作用,其中孕酮诱导的条件下TetR调控蛋白的抑制作用更强,是LuxR调控蛋白的一倍。本文的实验结果为睾丸酮丛毛单胞菌在自然界中类固醇激素的生物降解及基因调控研究提供实验依据。(本文来源于《长春理工大学》期刊2019-06-01）
张司晨[4]（2019）在《睾丸酮丛毛单胞菌中MBD的生物学作用及调控研究》一文中研究指出内消旋-丁二醇脱氢酶(Meso-butanediol dehydrogenase,MBD)是睾丸酮丛毛单胞菌(Comamonas testosteroni,C.T.)ATCC11996中的一种酶。因其能够催化反应产生大量的乙偶姻(Acetoin,AC)和内消旋-2,3-丁二醇(Meso-2,3-butanediol,meso-2,3-BD)生物产物,成为专家学者关注的热点。本文以MBD为研究对象,探索该酶在睾丸酮丛毛单胞菌中对甾体类激素代谢的影响及基因调控情况。通过激素诱导、总RNA提取、全转录组测序、测序信息比对、基因扩增、构建基因表达载体、外源蛋白表达、蛋白质亲和层析纯化、基因敲除、质粒共转化、高效液相、ELISA等实验方法,结果表明:经睾丸酮诱导后的C.T.菌中共有4835个基因在转录水平发生了差异,有110个显着差异基因,其中MBD基因差异Log2值达到1.80,与未诱导前差异达3.48倍。通过构建MBD敲除型C.T.株,并使用高效液相色谱法检测其对于睾丸酮、甲睾酮、雌酮、雌二醇等甾体类激素的降解能力,研究表明将C.T.菌中的内消旋-丁二醇脱氢酶基因敲除后对睾丸酮的降解率为27.80%,比野生型下降了47.40%;敲除株对甲睾酮的降解率为24.10%,比野生型下降了18.20%;敲除株对雌酮的降解率为14.80%,比野生型下降了16.20%;敲除株对雌二醇的降解率为19.30%,比野生型下降了5.60%。MBD共转化ELISA实验发现,LuxR和MBD质粒共转化株中MBD表达量降低,LysR和MBD质粒共转化株中MBD表达量提高,TetR和MBD质粒共转化株中MBD表达量差别不明显。本文实验结果说明MBD在睾丸酮丛毛单胞菌代谢睾丸酮等甾体类激素有着重要生物作用,睾丸酮丛毛单胞菌中的两种转录调节因子LuxR、LysR对MBD有调控作用,其中LuxR对其有下调作用,LysR对其有上调作用。研究结果对于研究C.T.菌中甾体类激素代谢通路及基因调控提供重要的理论和实验基础。(本文来源于《长春理工大学》期刊2019-06-01）
郭彤[5]（2019）在《睾丸酮丛毛单胞菌生物强化处理染料和焦化废水的研究》一文中研究指出难降解有机废水的高效生物处理,一直以来是环境领域关注的热点问题。通过从环境中筛选专性降解菌,发挥专性降解菌对特征污染物的高效降解特性和适宜条件下快速生殖的优势,可以有效强化废水中难降解有机物的去除,提高废水处理效率。本文以染料、焦化废水为研究对象,利用筛选的comonas testosterone(C.testosterone)菌生物强化活性污泥系统,实现细菌的自生殖和难降解有机物的高效去除,解决染料和焦化处理的难题,主要结论如下:(1)以提高废水中C.testosterone的适应性为目的,采用水蒸气相分离法制备了直径为1-3mm和表面有发达孔道结构的聚醚砜小球,应用于负载实验室筛选的C.testosterone QYY(NCBI No.KM246901)处理染料废水,以聚氨酯海绵负载和游离细菌为参比。结果显示,聚醚砜小球的表面孔径随着小球在水蒸气中暴露时间的延长而增大。当水蒸气柱的高度为2.5m时,制备的小球表面孔径达到3μm,由此细菌可以通过表面孔径向小球内部生长。聚醚砜小球的比表面积为1843cm~2/cm~3,其对C.testosterone QYY的负载量可达0.024g/cm~3,远高于聚氨酯的比表面积(564 cm~2/cm~3)和负载量(0.018g/cm~3)。生活污水作为营养基质,对染料废水进行补充,以提高其可生化性。当染料废水与生活污水的比例由1:2增大到1:1时,聚醚砜小球负载C.testosterone QYY对水中喹啉和苯酚的去除率达到100%,明显高于聚氨酯负载的(100%和34.7%)和游离型C.testosterone QYY(82%和2.4%)。聚醚砜负载C.testosterone QYY展示了最佳的耐冲击负荷能力,且能够完全去除水中的多种有机污染物,包括苯氨基甲酸酯、2-硝基甲苯和邻苯二甲酸二辛酯。(2)在上述基础上,利用C.testosterone bdq06直接处理染料废水,检验了C.testosterone bdq06在活性污泥系统中的快速生殖性能和强化有机物去除特征。C.testosterone bdq06被投加到活性污泥系统中,通过逐步驯化法强化活性污泥系统对染料废水的处理效率,生活污水被用作营养盐。结果显示,投加C.testosterone bdq06的活性污泥系统中,废水TOC的去除率达到85.1%,且随着有机负荷变化,出水水质没有明显的扰动。相比之下,没有添加C.testosterone bdq06的活性污泥系统中,TOC的去除率仅为11.1%,且恢复周期长达12天。C.testosterone bdq06显着强化了废水中喹啉、苯酚和其他有机物的去除,且只需添加1次即可自动生殖,并在活性污泥中形成优势种。(3)进一步将C.testosterone QYY加入微压内循环反应器(MPSR),用于生物强化处理焦化废水。MPSR反应器内通过侧面曝气,可以推动反应器内混合液循环运动,由此产生一个外环好氧区和中心缺氧区,在一个反应器内同时存在硝化和反硝化,实现同一个反应器内去除TOC和脱氮。试验结果显示,当有机负荷增大到2200mg/L时,TOC、氨氮和硝酸盐的去除率分别达到90%、92%和78%,且没有明显的扰动。高通量测序结果显示,C.testosterone QYY能够在反应器中自适应且快速生长,并在活性污泥中占据主导地位,有效降解了焦化废水中的喹啉和酚类化合物。(本文来源于《东北师范大学》期刊2019-06-01）
许定[6]（2018）在《睾丸酮丛毛单胞菌S44中单质硒纳米颗粒的形成与稳定机理和房间芽胞杆菌属一新种鉴定》一文中研究指出单质硒纳米颗粒(SeNPs)在医疗、环境修复以及材料科学中具有广泛应用。许多微生物可还原氧化态硒形成生物硒纳米颗粒(BioSeNPs)。与化学合成SeNPs相比,BioSeNPs更为廉价、环保、稳定和低毒。稳定性是限制纳米材料应用的重要因素,然而影响BioSeNPs形成和稳定的机制并不完全清楚,特别是胞内形成的BioSeNPs。本研究的主要目的是探究影响BioSeNPs形成和稳定的因素,以期指导人工合成稳定SeNPs并应用。细菌Comamonas testosteroni S44可还原亚硒酸盐并在胞内形成BioSeNPs。化学表征分析结果表明BioSeNPs在572 nm处有最大吸收峰,粒径大小主要分布在100-300 nm范围内,zeta电位值为-31.4±3 mV。通过透射电镜(TEM)可观察到在BioSeNPs表面覆盖有一层厚厚的有机质。红外光谱(FT-IR)分析表明BioSeNPs表面有机层包含了蛋白质、糖类以及脂类等物质,定量检测结果显示,1 g BioSeNPs表面结合了1069 mg蛋白质、23 mg糖类以及少量的脂类物质,表明蛋白质在BioSeNPs的形成和稳定过程中起着主要作用。SDS-PAGE和蛋白质组学结果显示超过800种蛋白质结合在BioSeNPs上,没有发现特定的装配蛋白对BioSeNPs进行组装。我们同时对BioSeNPs与胞内的高丰度蛋白进行了比较分析,发现主要是富含带电氨基酸残基(Asp、Glu、Arg和Lys)的蛋白质结合在BioSeNPs的表面,维持BioSeNPs的表面电荷,从而影响胞内BioSeNPs的形成与稳定。这项研究有利于我们在特定条件下,绿色可控合成稳定的SeNPs,并对硒纳米颗粒的表面修饰起到指导作用,以应用于医药、环境修复以及材料科学。另外,本研究还分离得到房间芽胞杆菌属(Domibacillus)的一株新菌XD80~T。与菌株XD80~T 16S rRNA序列相似性最高的菌株依次为Domibacillus iocasae CCTCC AB 2015183~T(98.66%),D.robiginosus DSM 25058~T(97.83%),D.tundrae KCTC33549~T(97.70%)和D.enclensis CCTCC AB 2011121~T(97.21%),这些菌与菌株XD80~T的DNA-DNA杂交率依次为37.4%、53.8%、53.6%和52.7%,均低于70%。多相分类学结果表明菌株XD80~T为革兰氏阳性菌、严格好氧、有荚膜、具运动性的杆状菌株。其生长温度范围是4-42°C(最适生长温度28°C),生长pH范围是6.0-10.0(最适pH7.0),NaCl耐受范围为0-6.5%(最适浓度2.5%)。主要极性脂为双磷脂酰甘油(DPG)、磷脂酰甘油(PG)、氨磷脂(APL)和四种未知的磷脂;主要脂肪酸(>5%)为iso-C_(15:0),anteiso-C_(15:0),wllc-C_(16:1),C_(16:0),iso-C_(17:0),anteiso-C_(17:0);MK-6为其主要呼吸醌。肽聚糖构型为A1γ型(A1γ-meso-DAP),肽尾具有内消旋二氨基庚二酸;全细胞糖主要为葡萄糖和核糖。DNA的G+C含量为46.4 mol%。多相分类学结果表明菌株XD80~T为房间芽胞杆菌属的一个新种,命名为山洞房间芽胞杆菌(Domibacillus antri)XD80~T,菌株保藏编号为XD80~T(=CCTCC AB 2015053~T=KCTC 33636~T)。本研究丰富并完善了房间芽胞杆菌属的分类,为将来该菌株的运用奠定了基础。(本文来源于《华中农业大学》期刊2018-06-01）
钟帆[7]（2018）在《睾丸酮丛毛单胞菌耐药性分析及感染分布》一文中研究指出目的:分析睾丸酮丛毛单胞菌的耐药性,为临床合理用药提供参考依据。方法:回顾性分析2012年1月-2016年12月检出的86株睾丸酮丛毛单胞菌体外药敏试验结果,采用WHONET 5.6软件分析病原菌的分布和耐药情况。结果:86株睾丸酮丛毛单胞菌,其中标本种类主要为脓液、无菌体液、分泌物和痰,集中于阑尾炎患者及有严重基础疾病患者的多部位感染,来源于外科、重症医学科和内科等科室。对氨苄西林/舒巴坦、哌拉西林/他唑巴坦、头孢唑林、头孢他啶、头孢曲松、头孢吡肟、头孢替坦、亚胺培南、阿米卡星、庆大霉素、妥布霉素、左氧氟沙星、呋喃妥因敏感性较高,达67.4%~96.5%;对氨苄西林、复方新诺明敏感性较低,为40.7%~45.9%;对氨曲南、环丙沙星耐药率高,达70.9%~93.0%。结论:睾丸酮丛毛单胞菌体外药敏结果目前处于较敏感的状态,为了减缓耐药菌株产生,临床医师应根据药敏试验结果及严重程度合理选择使用有效抗生素。(本文来源于《中外医学研究》期刊2018年02期）
李鑫,赫法贵,郑瑞,崔继哲[8]（2017）在《睾丸酮丛毛单胞菌3α-HSD/CR对萘和菲的降解》一文中研究指出睾丸酮丛毛单胞菌(Comamonas testosteroni)是一种严格需氧的革兰氏阴性杆菌,对不同环境具有很好的生态和生理适应性,其广泛栖居于土壤环境中,能以类固醇如睾丸酮、孕酮等为唯一碳源和能源,完全消化这类底物并因此而得名。睾丸酮丛毛单胞菌对多环芳烃(PAHs)等污染物也有很好的降解效果,该菌中的3α-HSD/CR(3α-羟类固醇脱氢酶/碳酰基还原酶)是分解代谢类固醇、多环芳烃等过程中的关键酶,但自然菌种中,该酶的编码基因hsdA的表达量甚微,很难达到应用于环境修复的目的。我们的研究发现,高表达hsdA的重组工程菌株具有高效降解萘和菲,显着降低菲对拟南芥毒害的作用,显示其具有用于实际环境污染修复的潜力。分别将对数生长期的野生菌和工程菌接种到含萘和菲50mg/L的液体无机盐培养基中,二者对萘和菲的降解随时间增长而增强,但在整个降解过程中,工程菌的降解能力都显着高于野生菌;96h时降解效率最高,工程菌对萘的降解效率达到92.77%,野生菌为67.95%;对菲的降解效率工程菌也显着高于野生菌。对20d龄的拟南芥茁进行2mM菲胁迫,同时分别加入相同浓度的野生菌和工程菌。72h后,菲胁迫下拟南芥出现黄化、坏死的状况,SOD和MDA的含量显着上升;而加入睾丸酮丛毛单胞蔺后,植株黄化减弱,SOD和MDA显着降低,并且工程菌的作用更为明显。工程菌通过对菲的降解,有效降低了较高浓度菲胁迫下ROS对拟南芥的伤害。对睾丸酮丛毛单胞菌中hsdA基因的表达进行ELISA检测,在无胆固醇诱导下,野生菌的3α-HSD/CR量只有2.1μg/mg,诱导后3α-HSD/CR达到10.3μg/mg;而工程菌在无诱导时,其3α-HSD/CR蛋白量就高达19.1μg/mg,诱导后3α-HSD/CR蛋白量为20.9μg/mg,都显着高于野生型菌。ELISA检测结果表明hsdA的表达与该菌对PAHs的降解作用一致。有必要深入研究该工程菌中hsdA的表达调控对PAHs降解的影响,以提高该工程菌在现实环境中更好发挥修复多环芳烃污染的作用。(本文来源于《2017第七届泛环渤海生物化学与分子生物学会学术交流会论文集》期刊2017-08-21）
陈羚[9]（2016）在《睾丸酮丛毛单胞菌TetR对甾体类化合物水解酶3,17β-HSD和3α-HSD表达的调节》一文中研究指出环境中过多甾体激素而产生的健康问题,备受人们关注,睾丸酮丛毛单胞杆菌分泌的3α-HSD和3,17β-HSD是分解类固醇类反应中重要的两种功能酶。通过研究一些调节因子对3α-HSD和3,17β-HSD表达的调节,给甾体激素降解提供更多的理论依据。本文将TetR基因通过PCR技术从睾丸酮丛毛单胞杆菌全序列扩增出来。为了证明该基因的功能,将TetR克隆进pET-15b、pUC19、pK18这几种不同的表达载体并分别与带有3α-HSD和3,17β-HSD调控序列的质粒共转化,并用不同甾体激素诱导分析Tet R的表达调控作用。通过荧光检测和ELISA检测,发现在有TetR表达的共转化菌中,3α-HSD蛋白的表达量比没有转入TetR基因的细菌相比明显降低(在TetR作用下3α-HSD蛋白的表达含量降低了32.72%)。同样在有TetR表达的共转化菌中3,17β-HSD蛋白的表达量比没有转入TetR基因的细菌相比明显降低(蛋白表达量下降26.20%)。表明TetR是3α-HSD和3,17β-HSD的抑制子,TetR对3,17β-HSD的阻遏区域在P2处。且睾丸酮可以解除TetR蛋白对3α-HSD蛋白和3,17β-HSD蛋白表达的抑制作用。进一步制备TetR多克隆抗体,通过ELISA验证TetR蛋白表达不受甾体激素调控。(本文来源于《长春理工大学》期刊2016-12-01）
孔昌盛,陈俊,邹晓艳,张义,朱玲娜[10]（2016）在《Kirby-Bauer法检测睾丸酮丛毛单胞菌的药物敏感性》一文中研究指出目的:用无临床实验室标准化研究所(Clinical and Laboratory Standards Institute,CLSI)解释标准的KirbyBauer(K-B)法和有CLSI解释标准的最低抑菌浓度(minimum inhibitory concentration,MIC)法分别测定睾丸酮丛毛单胞菌的耐药性情况,评价K-B法用于睾丸酮丛毛单胞菌敏感性检测的临床应用价值。方法:用K-B法、MIC法测定睾丸酮丛毛单胞菌对哌拉西林、头孢吡肟、哌拉西林/他唑巴坦、亚胺培南、美洛培南、阿米卡星、庆大霉素、妥布霉素、头孢他啶、环丙沙星的敏感性,K-B法暂借铜绿假单胞菌的解释标准,并对两种方法相互间的符合情况进行比较。结果:K-B法、MIC法检测哌拉西林、头孢吡肟比较,完全符合率97.4%,部分符合率2.6%;检测哌拉西林/他唑巴坦、亚胺培南、美洛培南比较,完全符合率100%;检测阿米卡星、庆大霉素、妥布霉素比较,完全符合率94.7%,部分符合率5.3%;检测头孢他啶比较,完全符合率97.4%,部分符合率2.6%;检测环丙沙星比较,完全符合率86.8%,部分符合率10.6%,完全不符合率2.6%。结论:两种药敏试验方法得出的结果具有高度的一致性。微生物实验室用K-B法对睾丸酮丛毛单胞菌的药敏检测可仅报告实验检测结果,而不报药敏检测解释结果。(本文来源于《中南大学学报(医学版)》期刊2016年08期）
睾丸酮丛毛单胞菌论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
睾丸酮丛毛单胞菌(Comamonas testosteroni)是一种能够降解甾体类激素的革兰氏阴性细菌,因其在环境修复中有重要的生物学作用,国内外专家学者对其在菌体细胞与环境、菌体内代谢酶、菌体基因之间相互作用等进行了广泛研究。本文以睾丸酮丛毛单胞菌中短链脱氢酶KAR为研究对象,通过敲除菌株构建、甾体类激素诱导、高效液相色谱分析、质粒共转化等方法研究KAR基因对五种甾体类激素的降解作用,同时研究了睾丸酮丛毛单胞菌中叁种调控蛋白对KAR的生物学调控作用。实验结果表明:通过HPLC检测野生型和KAR敲除突变的睾丸酮丛毛单胞菌激素降解情况,激素分别诱导14小时后,各种激素的残留量呈现出明显的差距。其中突变菌株中睾丸酮残留量要高于野生型43%左右;雌酮残留量要高于野生型37%左右;孕酮雌酮残留量要高于野生型28%左右,而雌二醇和甲睾酮分别相差9%和8%。睾丸酮丛毛单胞菌KAR基因敲除以后其降解甾体类激素的能力受到了影响,影响程度上睾丸酮>雌酮>孕酮>雌二醇>甲睾酮。通过将含有叁种调控蛋白的重组质粒与含启动子的KAR重组质粒共转化到BL21菌株中,激素诱导后,ELSA检测结果为,LuxR与KAR的共转化菌中,KAR表达量明显上升;LysR与KAR的共转化菌中,KAR表达量下降;TetR与KAR的共转化菌中,KAR表达量无明显变化。本文实验结果对于进一步研究KAR酶在睾丸酮丛毛单胞菌中甾体类激素代谢作用及调控研究提供实验基础。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
睾丸酮丛毛单胞菌论文参考文献
[1].詹建举,张升,朱来萍,马粉,姚俊.国内猪源睾丸酮丛毛单胞菌的分离与鉴定[J].中国畜牧兽医.2019
[2].李泽琦.睾丸酮丛毛单胞菌中KAR的生物学功能及调控研究[D].长春理工大学.2019
[3].孙基丰.睾丸酮丛毛单胞菌中多种蛋白与SDRx的生物学作用[D].长春理工大学.2019
[4].张司晨.睾丸酮丛毛单胞菌中MBD的生物学作用及调控研究[D].长春理工大学.2019
[5].郭彤.睾丸酮丛毛单胞菌生物强化处理染料和焦化废水的研究[D].东北师范大学.2019
[6].许定.睾丸酮丛毛单胞菌S44中单质硒纳米颗粒的形成与稳定机理和房间芽胞杆菌属一新种鉴定[D].华中农业大学.2018
[7].钟帆.睾丸酮丛毛单胞菌耐药性分析及感染分布[J].中外医学研究.2018
[8].李鑫,赫法贵,郑瑞,崔继哲.睾丸酮丛毛单胞菌3α-HSD/CR对萘和菲的降解[C].2017第七届泛环渤海生物化学与分子生物学会学术交流会论文集.2017
[9].陈羚.睾丸酮丛毛单胞菌TetR对甾体类化合物水解酶3,17β-HSD和3α-HSD表达的调节[D].长春理工大学.2016
[10].孔昌盛,陈俊,邹晓艳,张义,朱玲娜.Kirby-Bauer法检测睾丸酮丛毛单胞菌的药物敏感性[J].中南大学学报(医学版).2016
论文知识图
