导读:本文包含了卵泡闭锁论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献，主要关键词:八眉猪,卵泡闭锁,细胞凋亡,Hoechst,33258染色
卵泡闭锁论文文献综述
张涛杰,高静瑜,杨琨,扎西英派,常卫华[1]（2019）在《八眉猪卵泡闭锁过程的观察》一文中研究指出为了研究八眉猪卵泡闭锁过程中卵泡颗粒细胞的凋亡情况、卵泡组织结构变化以及卵泡膜内层毛细血管变化特点,试验在体视显微镜下观察并将卵泡分为健康卵泡、早期闭锁卵泡和晚期闭锁卵泡,用Hoechst 33258对闭锁不同时期卵泡颗粒细胞凋亡情况进行检测。采用苏木精-伊红(H.E.)染色法对卵泡膜层组织结构进行观察,CD34免疫组化染色对卵泡膜上毛细血管的分布进行观察。结果表明:随着卵泡闭锁程度的加深,卵泡颗粒细胞逐渐脱落进入卵泡腔,颗粒细胞凋亡增多,分布在卵泡膜内层的毛细血管随着卵泡闭锁程度的加深逐渐消失。说明卵泡颗粒细胞凋亡和卵泡膜上微血管消失是八眉猪卵泡闭锁的重要特征。(本文来源于《黑龙江畜牧兽医》期刊2019年10期）
扈琴吉,董雯雯,连锐锐,李福伟,殷斌[2]（2019）在《母鸡卵巢中不同等级卵泡的闭锁研究》一文中研究指出在产蛋高峰期,母鸡的卵巢中含有30~100个卵黄色卵泡,直径在1~8mm之间。一般母鸡体内卵泡数量与卵泡直径成反比,例如鸡体内有约20个直径为1~2mm和1个直径为7~8mm的卵泡,直径>8mm的卵泡数约为4~7个。本研究通过苏丹黑B染色法发现:鸡卵泡生长至3~5mm大约需要3d,再生长至5~8mm大约需要2d,生长至8mm到排卵需要6d。由于染料无法进入较小的卵泡,因此本试验没有检测到1~3mm之间的数据。研究也发现鸡体内含有5~25个闭锁卵黄色卵泡,这对于高产鸡是正常现象,但在整个试验中,只观察到一个闭锁的大卵黄色卵泡。因此本试验以这两种闭锁水平来定义不同卵泡的大小。本研究得出,鸡的排卵率经两种互补机制进行调控,一种促进卵泡在起始阶段的生长,另一种使小卵黄卵泡闭锁,抑制卵泡生长。(本文来源于《家禽科学》期刊2019年05期）
张海甄,翁嘉敏,史惠媚,吴佳琳,朱文俊[3]（2019）在《探讨DHEA对闭锁卵泡形成的机制》一文中研究指出建立闭锁卵泡动物模型的方法很多。但现今大多的有关的模型具有多囊卵巢改变,但这些模型大多模拟闭锁卵泡的一个或多个方面的病理特点,有的模型甚至与基本的闭锁卵泡的病理学特征不兼容,这致使模型不能更好地适应和发展相关的临床研究。有见及此,本研究将采用脱氢表雄酮(DHEA)皮下注射法建立小鼠卵泡闭锁模型。根据闭锁卵泡的两种内分泌特征,如小鼠卵巢形态学和小鼠性激素表达水平,建立了两种闭锁卵泡小鼠模型。为闭锁卵泡的研究提供实验依据。(本文来源于《实用妇科内分泌杂志(电子版)》期刊2019年07期）
刘红林,孟繁星[4]（2019）在《氧化应激对动物有腔卵泡闭锁的影响及机制》一文中研究指出氧化应激被认为是影响动物繁殖性能和造成人类不孕不育的重要因素,氧化应激诱导卵泡颗粒细胞凋亡,进而诱发卵泡闭锁是其影响动物繁殖性能的重要途径。近年来,针对氧化应激对有腔卵泡闭锁的影响研究取得了系列进展,主要包括:氧化应激对卵泡闭锁具有重要调控作用;叉头盒转录因子O1(FoxO1)是氧化应激诱发卵泡闭锁的关键性调控因子;卵泡液因子能够调控卵泡颗粒细胞氧化损伤的发生与程度。(本文来源于《南京农业大学学报》期刊2019年01期）
王冬雪[5]（2017）在《AMH抑制卵泡闭锁假说的研究进展》一文中研究指出目的：本文的假设是AMH抑制人类卵巢内的卵泡闭锁过程。(1)PCOS患者发生绝经的时间；(2)AMH抑制卵泡闭锁的时间及空间与颗粒细胞分泌AMH的时间及空间相一致；(3)AMH对调控卵泡生长发育的关键生长因子及酶活性的影响；(4)AMH抑制颗粒细胞凋亡。如果这些假设成立并应用于临床，比如：AMH激动剂可以延迟女性绝经的时间以及作为癌细胞化疗之前的药物；AMH拮抗剂用于PCOS患者的治疗。这些发现将会有助于AMH在人类医学进一步的发展。方法：卵泡闭锁的主要原因可能是卵母细胞及卵泡生长发育异常。在本文中我们将要讨论的假说是：AMH调控卵泡闭锁过程。AMH抑制卵泡闭锁的过程主要发生在非促性腺激素依赖过程中卵泡发育的初始阶段。虽然目前没有充分的实验证实AMH调控卵泡闭锁过程，但现在有一些间接实验数据共同支持这一假设。这些间接证据主要来源于临床和基础学科研究，这些研究不仅包括不同的患者(月经周期规律的女性、卵巢早衰、不孕及PCOS患者)，还包括不同的基本模型系统(敲除AMH基因的小鼠、人类细胞、体外培养的组织)。我们基于AMH在不同方面作为调控卵泡闭锁的关键因子而做一系统综述。结果：[1]Freeman EW, Sammel MD, Lin H, Boorman DW, Gracia CR. Contribution of the rate of change of antimullerian hormone in estimating time to menopause for late reproductive-age women. Fertil Steril. 2012;98:1254–1259. e1251–1252.[2]Lie Fong S, Visser JA, Welt CK, de Rijke YB, Eijkemans MJ, Broekmans FJ, et al. Serum anti-mullerian hormone levels in healthy females:a nomogram ranging from infancy to adulthood. J Clin Endocrinol Metab. 2012;97:4650–5.[3]Carlsson IB, Scott JE,Visser JA, Ritvos O, Themmen AP, Hovatta O. Anti-Mullerian hormone inhibits initiation of growth of human pri-mordial ovarian follicles in vitro. Hum Reprod. 2006;21:2223–7.[4]Durlinger AL, Kramer P, Karels B, de Jong FH, Uilenbroek JT, Grootegoed JA,et al. Control of primordial follicle recruitment by anti-Mullerian hormone in the mouse ovary. Endocrinology. 1999;140:5789–96.[5]Visser JA, Durlinger AL, Peters IJ, van den Heuvel ER, Rose UM, Kramer P, et al. Increased oocyte degeneration and follicular atresia during the estrous cycle in anti-Mullerian hormone null mice. Endocrinology. 2007;148:2301–8.[6]Merhi Z,Buyuk E, Berger DS, Zapantis A, Israel DD, Chua Jr S, et al. Leptin suppresses anti-Mullerian hormone gene expression through the JAK2/STAT3 pathway in luteinized granulosa cells of women undergoing IVF. Hum Reprod. 2013;28:1661–9.[7]Grossman MP,Nakajima ST, Fallat ME, Siow Y. Mullerian-inhibiting substance inhibits cytochrome P450 aromatase activity in human granulosa lutein cell culture. Fertil Steril. 2008;89:1364–70.[8]Garcia-Velasco JA, Moreno L, Pacheco A, Guillen A, Duque L, Requena A, et al. The aromatase inhibitor letrozole increases the concentration of intraovarian androgens and improves in vitro fertil-ization outcome in low responder patients:a pilot study. Fertil Steril. 2005;84:82–7.[9]Gleicher N, Weghofer A, Barad DH. The role of androgens in follicle maturation and ovulation induction:friend or foe of infertility treatment? Reprod Biol Endocrinol. 2011;9:116.结论：(本文来源于《2017年第五次世界中西医结合大会论文摘要集（中册）》期刊2017-12-06）
梁学超,蒋明,罗玉茹,张为民,卿素珠[6]（2017）在《猪卵巢发育的组织学变化及卵泡闭锁规律研究》一文中研究指出旨在对不同日龄猪卵巢组织结构以及卵巢发育过程中卵泡闭锁规律进行研究。取3、40、50、60、72、86、95及165日龄猪卵巢各3例,采用常规石蜡切片、HE染色和TUNEL技术检测卵巢组织结构及卵泡闭锁规律,结果表明,猪卵巢发育从组织学上可分为卵原细胞增殖期、卵泡缓慢生长期及卵泡快速生长期3个阶段。卵原细胞增殖期主要以卵原细胞的增殖分裂为特点;在卵泡缓慢生长期,原始卵泡的数量随日龄增加逐渐减少,初级卵泡数量及体积则明显增加;至卵泡快速生长期,生长卵泡的数量及体积继续增大,其数量在86日龄达到最大值;72日龄卵巢中出现叁级卵泡,至95日龄卵巢中出现近成熟卵泡。在各时期的卵巢组织,均可观察到卵原细胞及卵泡的闭锁现象,以原始卵泡的退化最为显着。TUNEL检测表明,在卵原细胞增殖期,可见大量原始卵泡及初级卵泡的闭锁,其闭锁主要源自卵泡卵母细胞的凋亡。在卵泡缓慢生长期,各级生长卵泡均可出现闭锁,初级卵泡的闭锁主要由卵母细胞的凋亡引起,也有部分是同时伴有卵母细胞和卵泡细胞凋亡的;次级卵泡的闭锁则主要由于颗粒层细胞的凋亡所致。在卵泡快速生长期,随着卵泡的快速生长,各级卵泡的闭锁也变得更加明显,次级卵泡及叁级卵泡的闭锁主要是由颗粒细胞凋亡引起。(本文来源于《畜牧兽医学报》期刊2017年10期）
贺亚媚[7]（2017）在《褪黑素对猪卵泡发育与闭锁的影响研究》一文中研究指出卵泡是哺乳动物卵巢的基本结构与功能单元,哺乳动物卵巢内存在大量处于不同发育阶段的卵泡,但是大部分卵泡在发育的不同阶段会发生退化和闭锁,只有少数才能发育成熟以致排卵。卵泡的发育与闭锁是一个受内分泌、旁分泌及基因调节的复杂生理过程,研究猪卵泡的发育与闭锁对更好地理解母猪的生殖机理及进一步提高母猪繁殖力均具有重要的理论价值和现实意义。褪黑素主要是由哺乳动物松果体产生的一种吲哚胺类激素,是联系机体神经系统和免疫系统的重要因子之一。研究发现,褪黑素具有较强的氧自由基清除功能,对人类、猪、牛、绵羊、大鼠、小鼠等物种的生殖机能具有调控作用。然而,有关褪黑素对猪卵泡闭锁的影响研究目前尚无系统报道。本研究探讨褪黑素受体基因在母猪不同组织中的表达规律,揭示猪不同程度闭锁有腔卵泡中褪黑素的含量水平,解析内源性褪黑素水平与卵泡闭锁的相关性,并进一步以猪健康有腔卵泡和颗粒细胞为体外培养模型,探讨不同水平褪黑素处理对体外培养猪有腔卵泡发育潜能的影响,以及褪黑素影响颗粒细胞凋亡与类固醇生成的作用途径,为进一步认识褪黑素对猪卵泡发育与闭锁的影响及其分子调控机制提供新的依据。本研究获得如下结果:1.成年母猪的脑、肝脏、胰脏、脂肪、卵巢、肾脏、心脏和脾脏等组织中均存在褪黑素受体基因MT1和MT2表达,猪卵巢和脑组织中MT1和MT2的mRNA表达均显着高于其它组织(P<0.05)。2.褪黑素在猪有腔卵泡中的含量分布呈显着差异(P<0.05),健康卵泡中褪黑素水平最高,早期闭锁卵泡中次之,晚期闭锁卵泡中最低。不同程度闭锁卵泡中颗粒细胞的凋亡率顺序为:晚期闭锁卵泡>早期闭锁卵泡>健康卵泡。卵泡内褪黑素水平与颗粒细胞凋亡率的皮尔逊相关系数为-0.847,褪黑素水平与卵泡闭锁存在强的负相关性。健康卵泡颗粒细胞中褪黑素受体MT1和MT2表达显着高于闭锁卵泡(P<0.05),褪黑素及其受体可能在猪卵泡发育与闭锁调控中发挥重要作用。3.体外培养直径3~5 mm的猪健康有腔卵泡,添加不同浓度褪黑素(0,0.05,0.2,0.8 ng/mL)处理6 d,检测褪黑素对体外培养猪有腔卵泡发育潜能的影响。结果揭示,培养48 h后,0.05,0.2和0.8 ng/mL褪黑素处理均提高了卵丘颗粒细胞层数,其中添加0.8 ng/mL褪黑素组A级COCs比率(17/48)最高。培养6 d后,褪黑素各处理均显着提高了卵泡的存活率及卵泡膜完整率,添加0.2 ng/mL褪黑素组卵泡存活率达95.83%,膜完整性达72.22%。培养3 d后,0.05 ng/mL褪黑素处理有腔卵泡获取的卵母细胞卵丘扩散率达到88.89%,0.2 ng/mL褪黑素处理卵母细胞极体排出率达56.94%,显着高于对照组(P<0.05)。培养3 d后,褪黑素各处理均显着降低了体外培养有腔卵泡中颗粒细胞的凋亡率(P<0.05)。表明添加0.05,0.2及0.8 ng/mL褪黑素对体外培养有腔卵泡的存活、卵丘增殖、卵泡膜完整性维持等均具有促进作用,并且能够显着抑制颗粒细胞凋亡。4.分离3~5 mm健康卵泡的颗粒细胞,添加不同水平褪黑素(0,0.001,0.01,0.1,1.0,10 ng/mL)体外培养48 h后,检测褪黑素处理对体外培养颗粒细胞增殖凋亡及类固醇生成的影响。结果表明,添加0.01 ng/mL褪黑素能够显着促进体外培养颗粒细胞的增殖活力及集落形成(P<0.01),刺激体外培养颗粒细胞的E2分泌(P<0.05),下调P4水平(P<0.05),上调类固醇合成酶CYP 17A和CYP 19A的表达(P<0.05),抑制颗粒细胞凋亡(P<0.05)。采用0.01 ng/mL褪黑素(MT)或MT联用其受体激动剂与拮抗剂((MT+IIK-7,MT+Luzindole,MT+4P-PDOT)处理体外培养颗粒细胞,检测发现,MT及MT+IIK-7处理均能显着抑制颗粒细胞凋亡(P<0.05),并上调MT2、Bcl-2、SOD1及GPX4的表达(P<0.05),降低Bax、P53和Caspase-3的表达(P<0.05);与MT处理相比,MT+Luzindole及MT+4P-PDOT处理组颗粒细胞的凋亡率则明显上升(P<0.05),MT单独处理引起的相关基因表达变化也被阻断或消减(P<0.05)。表明褪黑素可通过MT2受体激活方式上调体外培养颗粒细胞中Bcl-2、GPX4和SOD1表达,下调Caspase-3、P53和Bax表达,从而抑制颗粒细胞凋亡。5.体外无血清或内质网应激诱导条件培养猪卵巢颗粒细胞,添加不同水平褪黑素(0,0.001,0.01,0.1,1.0,10 ng/mL)处理24 h,检测褪黑素处理对颗粒细胞增殖与凋亡的作用。结果证明,1.0 ng/mL褪黑素处理显着抑制了由血清剥夺诱发的颗粒细胞凋亡(P<0.05),而Luzindole具有抵消褪黑素抗凋亡效应的作用(P<0.05)。与衣霉素Tun阳性处理、血清剥夺处理及空白对照相比,1.0 ng/mL褪黑素处理及血清剥夺后添加1.0 ng/mL褪黑素处理均显着抑制了颗粒细胞凋亡(P<0.05)。各处理对体外培养颗粒细胞中MT1和FAS表达无明显影响(P>0.05)。与空白对照组及MT+Luzindole组相比较,1.0 ng/mL褪黑素处理显着上调了MT2表达(P<0.05),抑制了FAS L、CHOP和GRP78的表达(P<0.05);与对照组相比较,含1.0 ng/mL褪黑素各组SOD1和GPX4表达水平均显着升高(P<0.05)。褪黑素可通过其受体激活途径调控FAS、FSA L、CHOP、GRP78、SOD1和GPX4基因的表达,从而有效抑制体外培养颗粒细胞的凋亡。综上所述,猪卵泡中褪黑素水平与卵泡闭锁程度紧密相关,添加适宜水平褪黑素可促进体外培养有腔卵泡的生长发育,并能抑制体外培养颗粒细胞的凋亡,调节颗粒细胞类固醇分泌,有差别地调控死亡受体、内质网应激应答因子及抗氧化酶基因等的表达。褪黑素可能是通过其直接清除自由基功能发挥作用的,但同时也通过膜受体激活途径发挥其调控作用。本研究对进一步认识猪卵泡发育机理研究提供新的理论依据。(本文来源于《西北农林科技大学》期刊2017-04-01）
刘慧萍,曾柳庭,张国民,杨凯麟[8]（2017）在《颗粒细胞与卵母细胞自噬对卵泡发育和闭锁的调控》一文中研究指出卵巢早衰(POF)、多囊卵巢综合征(PCOS)等卵巢生殖疾病发病率日益增高,已经成为严重危害女性身心健康的疾病。目前研究表明卵巢生殖疾病中各时期卵泡的闭锁由颗粒细胞(GCs)和卵母细胞凋亡引起,随着对卵泡发育中分子机制研究的深入,揭示了GCs和卵母细胞的凋亡并不是导致卵泡闭锁的唯一因素,自噬的诱导同时参与了卵泡的生长、闭锁和分化,介导了颗粒细胞和卵母细胞的程序性死亡。本文就当前GCs与卵母细胞自噬的诱导进行系统回顾,总结卵巢卵泡发育和闭锁过程中细胞自噬机制,旨在为后续研究提供参考。(本文来源于《中华生殖与避孕杂志》期刊2017年01期）
王立强,郑宇新,张妮娜,李青旺,江中良[9]（2016）在《牛卵泡闭锁与颗粒细胞凋亡基因表达研究》一文中研究指出颗粒细胞凋亡与卵泡闭锁是颗粒细胞功能基因及凋亡相关基因的表达结果,通过手术法获取叁种不同直径的牛卵泡(小型卵泡<2 mm;中型卵泡2~6 mm;大型卵泡>6mm),分离卵泡颗粒细胞并提取总RNA,以研究不同直径卵泡中颗粒细胞相关基因的表达。结果表明,牛卵巢上小型卵泡颗粒细胞中Fshr的表达显着低于中型和大型卵泡(P<0.05),而中型和大型两者之间差异不显着(P>0.05);中型卵泡和小型卵泡颗粒细胞中CYP19的相对表达显着低于大型卵泡(P<0.05);中型卵泡和小型卵泡颗粒细胞中促细胞凋亡基因BAX的表达显着低于大型卵泡(P<0.05),而在中型和大型卵泡颗粒细胞中抑制细胞凋亡基因BCL2的表达显着低于小型卵泡(P<0.05),且随着卵泡的增大而下调;Casapase 8与Caspase3的表达模式相同,其表达量均随着卵泡直径的增加显着上升(P<0.05)。随着卵泡生长与直径增加,卵泡内部分颗粒细胞虽然在继续增殖,部分颗粒细胞已经开始凋亡,卵泡逐渐进入闭锁阶段。(本文来源于《家畜生态学报》期刊2016年12期）
张家庆,高彬文,王献伟,马强,高原[10]（2016）在《猪卵泡期中等卵泡发育和闭锁的相关基因表达及激素水平分析》一文中研究指出研究猪卵泡期内有腔卵泡发育和闭锁中颗粒细胞自噬与凋亡、卵泡内调控因子、类固醇激素及相关酶类的变化,为提高排卵前卵泡发育数量提供理论依据。从猪卵泡期卵巢中分离3~5 mm有腔卵泡,根据发育变化分为健康卵泡、早期闭锁和晚期闭锁3类,应用HE染色观察内部形态结构变化,应用酶免法检测卵泡液中雌二醇(E2)和孕酮(P4)的浓度变化,采用Real-time PCR方法检测自噬相关基因(Becline、LC3B、ATG3、ATG5、ATG7)、凋亡相关基因(Caspase-3、Bim、Bcl-2和Bax)、类固醇合成酶基因(CYP11A1、3βHSD、CYP17A1、CYP19A3)、激素受体和卵泡内关键调控基因(FSHR、ERα、CART、SMAD4)在不同类型卵泡中的表达变化。结果表明,健康卵泡中颗粒细胞层完整,有少量凋亡细胞,早期和晚期闭锁卵泡中颗粒细胞层分散,且凋亡细胞明显增多。早期和晚期闭锁卵泡中P4/E2显着高于健康卵泡,自噬和凋亡相关基因的表达水平在早期和晚期闭锁的卵泡中显着高于健康卵泡,类固醇合成酶基因CYP11A1和3βHSD的表达量在早期和晚期闭锁卵泡中显着高于健康卵泡,CYP17A1、CYP19A3、FSHR、ERα和SMAD4的表达量在早期和晚期闭锁卵泡中显着低于健康卵泡,而CART的表达量则呈现相反的趋势。由此可见,颗粒细胞自噬和凋亡是卵泡闭锁的主要诱因,而类固醇合成酶基因CYP11A1和3βHSD通过提高卵泡液中孕酮的水平加速了卵泡闭锁的进程。(本文来源于《河南农业科学》期刊2016年11期）
卵泡闭锁论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
在产蛋高峰期,母鸡的卵巢中含有30~100个卵黄色卵泡,直径在1~8mm之间。一般母鸡体内卵泡数量与卵泡直径成反比,例如鸡体内有约20个直径为1~2mm和1个直径为7~8mm的卵泡,直径>8mm的卵泡数约为4~7个。本研究通过苏丹黑B染色法发现:鸡卵泡生长至3~5mm大约需要3d,再生长至5~8mm大约需要2d,生长至8mm到排卵需要6d。由于染料无法进入较小的卵泡,因此本试验没有检测到1~3mm之间的数据。研究也发现鸡体内含有5~25个闭锁卵黄色卵泡,这对于高产鸡是正常现象,但在整个试验中,只观察到一个闭锁的大卵黄色卵泡。因此本试验以这两种闭锁水平来定义不同卵泡的大小。本研究得出,鸡的排卵率经两种互补机制进行调控,一种促进卵泡在起始阶段的生长,另一种使小卵黄卵泡闭锁,抑制卵泡生长。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
卵泡闭锁论文参考文献
[1].张涛杰,高静瑜,杨琨,扎西英派,常卫华.八眉猪卵泡闭锁过程的观察[J].黑龙江畜牧兽医.2019
[2].扈琴吉,董雯雯,连锐锐,李福伟,殷斌.母鸡卵巢中不同等级卵泡的闭锁研究[J].家禽科学.2019
[3].张海甄,翁嘉敏,史惠媚,吴佳琳,朱文俊.探讨DHEA对闭锁卵泡形成的机制[J].实用妇科内分泌杂志(电子版).2019
[4].刘红林,孟繁星.氧化应激对动物有腔卵泡闭锁的影响及机制[J].南京农业大学学报.2019
[5].王冬雪.AMH抑制卵泡闭锁假说的研究进展[C].2017年第五次世界中西医结合大会论文摘要集（中册）.2017
[6].梁学超,蒋明,罗玉茹,张为民,卿素珠.猪卵巢发育的组织学变化及卵泡闭锁规律研究[J].畜牧兽医学报.2017
[7].贺亚媚.褪黑素对猪卵泡发育与闭锁的影响研究[D].西北农林科技大学.2017
[8].刘慧萍,曾柳庭,张国民,杨凯麟.颗粒细胞与卵母细胞自噬对卵泡发育和闭锁的调控[J].中华生殖与避孕杂志.2017
[9].王立强,郑宇新,张妮娜,李青旺,江中良.牛卵泡闭锁与颗粒细胞凋亡基因表达研究[J].家畜生态学报.2016
[10].张家庆,高彬文,王献伟,马强,高原.猪卵泡期中等卵泡发育和闭锁的相关基因表达及激素水平分析[J].河南农业科学.2016