水疱性口炎病毒论文_李红利,史书铭,关继羽,林静,孙诗惠

导读:本文包含了水疱性口炎病毒论文开题报告文献综述、选题提纲参考文献及外文文献翻译,主要关键词:口炎,水疱,病毒,抗原,抗体,蛋白质,包膜。

水疱性口炎病毒论文文献综述

李红利,史书铭,关继羽,林静,孙诗惠[1](2019)在《水疱性口炎病毒经AKT/Bax信号通路诱导神经细胞凋亡》一文中研究指出VSV神经嗜性是该病毒作为活病毒疫苗载体广泛应用的最大障碍,因此研究VSV诱导神经细胞的损伤对深入探讨VSV嗜神经性的分子机制尤为重要。本研究通过直接免疫荧光检测,可见VSV感染N2a细胞呈细胞核碎裂、染色质致密浓染等细胞凋亡的形态学变化;Annexin-V FITC/PI流式细胞术检测表明,接种VSV 8 h后N2a细胞凋亡率接近50%;Western blot结果显示在VSV感染过程中,磷酸化AKT表达量降低,Bax表达量升高。上述结果表明,VSV可通过AKT/Bax信号通路诱导神经细胞凋亡。(本文来源于《中国兽医学报》期刊2019年05期)

胡涛,金郁,汪学龙,李群[2](2019)在《水疱性口炎病毒纯化抗原制备多克隆抗体的检测结果分析》一文中研究指出目的水疱性口炎病毒纯化抗原制备兔抗VSV多克隆抗体,免疫学方法检测其结果分析比较。方法纯化的抗原制备兔抗VSV多克隆抗体,采用双向琼脂扩散试验,间接ELISA方法和中和试验测定效价。结果兔抗VSV多克隆抗体最高效价双向琼脂扩散试验为1∶32,间接ELISA法为1∶640,中和试验为1∶256。结论试验结果分析比较表明,建立纯化抗原制备的兔抗VS多克隆抗体,中和试验特异性好、敏感性高,可做为VSV的血清学检测和流行抗学调查抗供技术保障。(本文来源于《热带病与寄生虫学》期刊2019年01期)

卢建博,郑文铝,陈文文,余硕,刘珠果[3](2019)在《基于重组水疱性口炎病毒载体的寨卡疫苗构建及免疫原性评价》一文中研究指出目的建立表达寨卡病毒E蛋白或含prM蛋白的G蛋白缺失型重组水疱性口炎病毒(rVSV)载体疫苗,评价其免疫效果。方法选取E蛋白或含prM蛋白基因,分别构建入prVSVΔG和prVSV骨架质粒,通过反向遗传学操作得到2种缺失VSV-G蛋白的重组病毒疫苗(rVSV△G-E、rVSV△G-prM-2A-E)和2种含VSV-G蛋白的重组病毒疫苗(rVSV-E、rVSV-prM-2A-E),免疫BALB/c小鼠后进行体液免疫及细胞免疫水平检测,比较4种重组病毒疫苗免疫差异。结果 rVSV△G-prM-2A-E免疫后诱导产生的特异性抗体与rVSV-prM-2A-E免疫后抗体水平相当(P>0.05),但显着高于rVSV△G-E免疫组(P<0.05);rVSV△G-prM-2A-E免疫诱导产生的中和抗体略高于rVSV△G-E和rVSVE免疫组,但低于rVSV-prM-2A-E免疫组;4种重组疫苗免疫后能有效诱导细胞分泌淋巴细胞因子白细胞介素-2(IL-2)、γ-干扰素(IFN-γ)产生,但诱导产生的IFN-γ水平无显著差异(P>0.05);rVSV△G-prM-2A-E及rVSV△G-E的扩增需要添加VSV-G。结论提供额外的VSV-G可成功包装并扩增rVSV△G-prM-2A-E,且该疫苗诱导产生较高中和抗体及细胞免疫反应,可进一步研发成实用疫苗。(本文来源于《军事医学》期刊2019年03期)

胡涛,李群,刘伯玉[4](2019)在《教学用纯化水疱性口炎病毒抗原制备兔多克隆抗体结果分析》一文中研究指出目的用纯化水疱性口炎病毒抗原制备兔抗VSV多克隆抗体,经免疫学方法检测并分析其结果。方法纯化VSV抗原免疫家兔后收集免疫血清,采用双向琼脂扩散试验、酶联免疫吸附试验(ELISA)和中和试验测定效价。结果兔抗VSV多克隆抗体双向琼脂扩散试验最高效价为1∶32,ELISA法最高效价为1∶320,中和试验最高效价为1∶256。结论纯化VSV抗原制备的兔抗VSV多克隆抗体特异性好、敏感性高,可为课堂教学、VSV科研及流行病学调查提供可靠依据和技术保障。(本文来源于《卫生职业教育》期刊2019年06期)

张彩虹,林彦星,杨俊兴,曹琛福,吕建强[5](2018)在《水疱性口炎病毒免提取核酸荧光定量PCR鉴别检测方法的建立》一文中研究指出为建立可快速鉴别水疱性口炎病毒印第安纳型(VSV-IND)和新泽西型(VSV-NJ)免提核酸的荧光定量PCR检测方法,根据VSV-IND和VSV-NJ两种血清型相对保守的L基因序列,设计2对特异性引物和2条探针,探针用不同的荧光基团进行标记。经过对各反应条件的优化,建立了直接从样品中鉴别VSV-IND和VSV-NJ的荧光定量PCR方法,并对该方法的特异性和敏感性进行分析。结果显示,该直扩荧光定量PCR能准确鉴别VSV-IND和VSV-NJ,两者没有交叉反应现象,对其他几种相似病原的灭活抗原,如口蹄疫病毒(FMDV)、猪水疱病病毒(SVDV)、蓝舌病病毒(BTV)、鹿流行性出血热病毒(EHDV)、小反刍兽疫病毒(PPRV)、牛病毒性腹泻病毒(BVDV)等检测均呈阴性。对10倍系列稀释的水疱性口炎灭活病毒液的检测敏感性可达10-5,与传统的荧光定量PCR的检测敏感性相当。该方法无需提取核酸,可在2h内完成对样品的检测,结果准确、快速、灵敏,为印第安纳型和新泽西型水疱性口炎病毒的特异性鉴别提供了一种切实可行的方法。(本文来源于《动物医学进展》期刊2018年11期)

卢建博,郑文铝,余云舟,叶建强,戴秋云[6](2018)在《重组水疱性口炎病毒载体病毒包装体系的建立及优化》一文中研究指出目的:建立并优化重组水疱性口炎病毒(VSV)载体病毒包装体系,以获得稳定高效的重组VSV载体疫苗包装系统。方法:以prVSVΔG-GFP为骨架载体,pBS-N、pBS-P、pBS-G、pBS-L为辅助载体,探索不同的骨架质粒及辅助质粒用量、包装细胞系、重组痘病毒vTF7-3作用时间、转染试剂作用时间等因素对重组VSV载体病毒包装的影响,用光学显微镜及荧光显微镜观测重组VSV载体病毒的包装效果,应用TCID50法测定重组VSV的滴度。结果:重组VSV的包装效率随着辅助质粒或包装质粒总量的减少而降低,293T细胞较BHK21-WI2细胞包装效率更高,适当延长重组痘病毒vTF7-3作用时间或转染试剂作用时间能提高VSV包装效率。优化的病毒包装条件为:选用293T细胞,v TF7-3以5~15 MOI感染细胞1 h或以5 MOI感染细胞1~4 h,总质粒用量为3.67~22μg,转染细胞6~14 h可获得高效包装的rVSVΔG-GFP。采用优化包装条件高效包装了rVSVΔG-ZE病毒。结论:获得了稳定高效的重组VSV包装体系,为重组VSV载体的疫苗研究奠定了基础。(本文来源于《生物技术通讯》期刊2018年02期)

石晓丹[7](2017)在《以水疱性口炎病毒VSV为载体的新型寨卡病毒疫苗的研究》一文中研究指出寨卡病毒(ZIKV)与登革热病毒、西尼罗病毒、黄热病毒、日本脑炎病毒等同属于黄病毒属。该病毒于乌干达恒河猴体内首次分离得到,随后仅有零星报道。2015年ZIKV发生大规模爆发,随后疫情蔓延至美洲各国,相继有多个国家出现寨卡病毒感染病例。寨卡病毒引起的临床症状较轻,表现为乏力、发热、结膜炎、肌肉酸痛等,患者一般感染7天即可痊愈。然而,最近研究表明,寨卡病毒感染可引起新生儿的头小畸形症和成年的吉兰-巴雷综合症,因此受到广泛关注。寨卡病毒是一种蚊媒传播的单股正链RNA病毒,病毒呈二十面体结构,由囊膜蛋白(E)、膜蛋白(M)、核衣壳(C)和病毒基因组组成,其中E蛋白负责病毒与细胞受体结合及病毒的进入,其表面含有多种抗原表位,是疫苗研究的潜在靶点。水疱性口炎病毒VSV为弹状病毒科的单股负链RNA病毒,VSV载体疫苗由于具有操作简单、病毒滴度高、单次免疫即可产生免疫保护效果等优势,越来越多的被应用于疫苗的制备中。本文通过VSV反向遗传操作系统,构建表达ZIKV囊膜蛋白260-425氨基酸的重组病毒疫苗VSV-ZikaE260-425,并在小鼠体内对该疫苗诱导的免疫反应和保护性进行了检测。首先我们构建了编码E基因260-425氨基酸的质粒XN2-Zika E260-425,通过在BHK细胞共转辅助质粒pN、pL、pP包装产生重组病毒VSV-Zika E260-425。蛋白免疫印迹及间接荧光标记证明ZikaE260-425蛋白在感染细胞的表达。随后我们用此病毒通过滴鼻方式免疫小鼠,通过检测1、3、5周血清IgG及粪便IgA抗体水平,我们发现重组VSV-Zika E260-425能够在在免疫后一周可产生较高水平抗体IgA,第3周引起较高水平的抗体IgG,接着Brdu法检测表明,VSV-ZikaE260-425免疫组与对照组相比,可引起强烈的特异性淋巴细胞增值反应。T细胞IFN-γ染色的方法表明,VSV-ZikaE260-425组与对照组相比CD8~+T细胞IFN-γ~+的分泌增加。最后,我们通过腹腔注射寨卡病毒ZikaPRVABC59建立小鼠感染模型,Real-time结果表明寨卡病毒感染后在小鼠的脑、脊髓和睾丸组织中表达较高。接着,我们以ZikaPRVABC59腹腔注射免疫第五周的雄性BALB/c小鼠,取感染第4天脑、脊髓和睾丸组织,检测病毒复制量,结果表明VSV-ZikaE260-425可有效地降低ZIKV感染,起到特异性免疫保护作用。综上所述,我们成功制备了表达ZikaE260-425的重组病毒VSV-ZikaE260-425,并且该疫苗在小鼠体内成功的诱导了ZIKV特异性免疫应答,对感染小鼠能够起到保护作用,我们的研究为寨卡疫苗研发提供了一种新的策略。(本文来源于《苏州大学》期刊2017-04-01)

张敏敏,温志远,葛金英,李晓芳,步志高[8](2016)在《新城疫表达水疱性口炎病毒G蛋白重组病毒的致病力和免疫原性研究》一文中研究指出水疱性口炎(Vesicular stomatitis,VS)是由水疱性口炎病毒(Vesicular stomatitis virus,VSV)引起的,动物病毒性传染病。该病毒属于弹状病毒科,水疱病毒属,主要感染牛、羊和猪,引起动物的口腔、鼻粘膜以及乳头和脚部损伤。OIE将VS列为法定必须通报传染病,我国将VS列为国家级动物检疫二类疫病。VSV基因组主要编码N-P-M-G-L5个结构蛋白,其中位于病毒粒子囊膜中的G蛋白(GP)是其最主要的免疫原性蛋白,可以诱导(本文来源于《中国畜牧兽医学会生物技术学分会暨中国免疫学会兽医免疫分会第十二次学术研讨会论文集》期刊2016-10-19)

马燕妮[9](2015)在《Ⅲ型干扰素减弱作为疫苗载体的水疱性口炎病毒的致病性》一文中研究指出水疱性口炎病毒(VSV)被广泛地用于疫苗载体及瘤细胞溶解剂的研究。但出于对安全性的考虑,大大限制了它在人体中的应用。归属于细胞因子的Ⅲ型λ干扰素(IFN-λ)家族与IFN-α/β家族有着相同的信号转导路径,所以也能激发相似的抗病毒活性。不过,IFN-λ是通过一种细胞型特异性方式表达的独特的受体-复合物形式实现信号转导的,正是这个原因限制了它只对上皮屏障组织具有活性,(本文来源于《微生物学免疫学进展》期刊2015年05期)

郭金玉,张鹤晓,高志强,林祥超,臧京帅[10](2015)在《水疱性口炎病毒糖蛋白的原核表达及间接ELISA诊断技术的试验》一文中研究指出本研究利用重组质粒p ET-32a-NJ-G666(针对新泽西型水疱性口炎病毒截断的G蛋白基因片段约666 bp),将其转化至Rosetta宿主菌,用0.6 mmol/L IPTG在30℃诱导4 h,经10%聚丙烯酰胺凝胶电泳显示,表达的重组蛋白分子质量与预期的30 k Da相符。在此基础上,利用纯化的重组蛋白作为抗原包被酶标板,建立了可检测新泽西型VSV抗体的间接ELISA方法。该方法检测东部马脑脊髓炎和马西尼罗病毒的阳性血清均为阴性,且板内和板间变异系数均小于10%。试验结果表明,建立的间接ELISA方法特异性强、重复性好,为新泽西型VSV血清抗体的检测提供了依据。(本文来源于《中国兽医杂志》期刊2015年07期)

水疱性口炎病毒论文开题报告

(1)论文研究背景及目的

此处内容要求:

首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景,再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题,并提出你的论文准备的观点或解决方法。

写法范例:

目的水疱性口炎病毒纯化抗原制备兔抗VSV多克隆抗体,免疫学方法检测其结果分析比较。方法纯化的抗原制备兔抗VSV多克隆抗体,采用双向琼脂扩散试验,间接ELISA方法和中和试验测定效价。结果兔抗VSV多克隆抗体最高效价双向琼脂扩散试验为1∶32,间接ELISA法为1∶640,中和试验为1∶256。结论试验结果分析比较表明,建立纯化抗原制备的兔抗VS多克隆抗体,中和试验特异性好、敏感性高,可做为VSV的血清学检测和流行抗学调查抗供技术保障。

(2)本文研究方法

调查法:该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。

观察法:用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。

实验法:通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。

文献研究法:通过调查文献来获得资料,从而全面的、正确的了解掌握研究方法。

实证研究法:依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。

定性分析法:对研究对象进行“质”的方面的研究,这个方法需要计算的数据较少。

定量分析法:通过具体的数字,使人们对研究对象的认识进一步精确化。

跨学科研究法:运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。

功能分析法:这是社会科学用来分析社会现象的一种方法,从某一功能出发研究多个方面的影响。

模拟法:通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。

水疱性口炎病毒论文参考文献

[1].李红利,史书铭,关继羽,林静,孙诗惠.水疱性口炎病毒经AKT/Bax信号通路诱导神经细胞凋亡[J].中国兽医学报.2019

[2].胡涛,金郁,汪学龙,李群.水疱性口炎病毒纯化抗原制备多克隆抗体的检测结果分析[J].热带病与寄生虫学.2019

[3].卢建博,郑文铝,陈文文,余硕,刘珠果.基于重组水疱性口炎病毒载体的寨卡疫苗构建及免疫原性评价[J].军事医学.2019

[4].胡涛,李群,刘伯玉.教学用纯化水疱性口炎病毒抗原制备兔多克隆抗体结果分析[J].卫生职业教育.2019

[5].张彩虹,林彦星,杨俊兴,曹琛福,吕建强.水疱性口炎病毒免提取核酸荧光定量PCR鉴别检测方法的建立[J].动物医学进展.2018

[6].卢建博,郑文铝,余云舟,叶建强,戴秋云.重组水疱性口炎病毒载体病毒包装体系的建立及优化[J].生物技术通讯.2018

[7].石晓丹.以水疱性口炎病毒VSV为载体的新型寨卡病毒疫苗的研究[D].苏州大学.2017

[8].张敏敏,温志远,葛金英,李晓芳,步志高.新城疫表达水疱性口炎病毒G蛋白重组病毒的致病力和免疫原性研究[C].中国畜牧兽医学会生物技术学分会暨中国免疫学会兽医免疫分会第十二次学术研讨会论文集.2016

[9].马燕妮.Ⅲ型干扰素减弱作为疫苗载体的水疱性口炎病毒的致病性[J].微生物学免疫学进展.2015

[10].郭金玉,张鹤晓,高志强,林祥超,臧京帅.水疱性口炎病毒糖蛋白的原核表达及间接ELISA诊断技术的试验[J].中国兽医杂志.2015

论文知识图

、PKR、OAS和Mx1抗病毒机理[57]1 水疱性口炎病毒(VSV) A:电镜...绵羊痘病毒实时荧光RPA检测方法的特异性...水疱性口炎与狂犬病毒嵌合G蛋白包装的...山羊痘病毒实时荧光RPA检测方法的特异性...紫外照射灭活纤维蛋白原中的水疱性

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水疱性口炎病毒论文_李红利,史书铭,关继羽,林静,孙诗惠
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