卵泡刺激素受体论文_王舒可,郑梅玲

导读:本文包含了卵泡刺激素受体论文开题报告文献综述、选题提纲参考文献及外文文献翻译,主要关键词:刺激素,卵泡,受体,抗体,小鼠,胎盘,卵巢综合征。

卵泡刺激素受体论文文献综述

王舒可,郑梅玲[1](2019)在《卵泡刺激素受体在胎盘血管形成及维持妊娠中的作用》一文中研究指出早期认为卵泡刺激素受体(FSHR)仅存在于卵巢及睾丸内,后被证实其广泛存在于生殖系统如子宫内膜、子宫肌层、输卵管等诸多部位,具有诱导类固醇激素合成、调节子宫肌层收缩、调节正常生殖内分泌功能等作用。另有研究发现,恶性肿瘤组织、胎盘组织中的血管内皮细胞同样有FSHR表达,并在促进血管生成中起重要作用。在正常妊娠期间,胚胎着床后胎盘血运形成是否良好对胚胎的发育十分关键,早期胚胎胎盘血运不良是导致胚胎自然流产的重要因素之一,中晚期胚胎胎盘血运构建不良则会导致早产、胎儿生长受限、妊娠期高血压疾病等并发症发生,提示FSHR对维持正常妊娠起关键性作用。现对FSHR在生殖系统及妊娠期间胎盘血管生成过程中作用的研究进展进行综述。(本文来源于《国际生殖健康/计划生育杂志》期刊2019年05期)

李德邦,陈秀娟[2](2018)在《卵泡刺激素及受体与男性生殖关系的研究进展》一文中研究指出卵泡刺激素(FSH)是调控男女双方性腺功能的关键内分泌激素。FSH刺激男性睾丸Sertoli分化,促进睾丸发育,促进精原细胞的有丝分裂。FSH维持成人Sertoli细胞代谢,对于精子生成、生殖细胞的存活及男性生育发挥重要作用。FSH通过FSH受体(FSHR)发挥作用,FSH及FSHR基因突变及基因多态性都有可能影响FSH对靶器官的作用。本文对FSH及FSHR与男性生殖关系进行综述。(本文来源于《中国医师杂志》期刊2018年11期)

李玲霞,吴锦艳,曹小安,冯倩,杜国玉[3](2018)在《卵泡刺激素受体FSHR234纳米抗体的分离纯化及多克隆抗体的制备》一文中研究指出【背景】卵泡刺激素受体(Follicle-stimulating hormone receptor,FSHR)在人体成熟破骨细胞及单核细胞表面表达,成为阻断卵泡刺激素(FSH)作用的潜在靶点,制备亲和力较高的FSHR抗体已成为靶向治疗FSH相关疾病的切入点。【目的】构建FSHR重组载体获得表达量较高的可溶性蛋白,进一步制备骆驼多克隆抗体及其纳米抗体。【方法】利用XhoⅠ和Bam HⅠ双酶切重组质粒p ET30a-FSHR234,将目的基因fshr构建于p GEX-4T-1载体并进行原核表达,利用Western blot及ELISA检测目的蛋白的配体结合能力。免疫新疆双峰驼制备骆驼多克隆抗体,并利用噬菌体展示技术筛选获得FSHR纳米抗体。细胞免疫化学法检测FSHR抗体在coav-3的表达情况。【结果】构建了pGEX-4T-1-FSHR234重组质粒,获得了表达量较高的FSHR234可溶性蛋白;并构建了5株FSHR纳米抗体,鉴定出一株结合能力较强的纳米抗体,命名为VHH-3F9。【结论】制备的骆驼FSHR多克隆抗体效价达1:128 000,筛选获得的VHH-3F9纳米抗体能与FSHR234具有较高的结合性,且两者均能表达于coav-3细胞表面。(本文来源于《微生物学通报》期刊2018年11期)

潘莉娜,周从容,黄永利,吕晶,罗希[4](2018)在《血清黄体生成素与卵泡刺激素比值及雄激素受体基因多态性与多囊卵巢关系的探讨》一文中研究指出目的探讨血清黄体生成素(LH)与卵泡刺激素(FSH)比值在多囊卵巢(PCOM)患者中的参考价值;探讨雄激素受体(AR)基因rs6152G/A多态性与PCOM的关系。方法收集2016年6—12月在贵州医科大学附属医院生殖中心就诊的PCOM患者共57例,无PCOM的不孕患者34例,记录患者B超下双侧卵泡数目及基础性激素值,并提取全血DNA,用聚合酶链反应法(PCR)扩增AR基因含rs6152基因位点的片段并测序。结果(1)PCOM组较对照组患者年龄偏小、窦卵泡数(AFC)明显增多,睾酮值增加,差异有统计学意义(P<0.01);将LH/FSH比值进行分组比较,当LH/FSH≥1时,睾酮值和AFC数较LH/FSH<1组明显增加,差异有统计学意义(P<0.01)。(2)随着LH/FSH比值的增高,携带易患高雄激素血症(HA)AR基因rs6152A基因型的患者人数增加,但相关趋势无统计学意义。结论 (1)LH/FSH≥1是PCOM患者提前干预的重要指标,可能会减少多囊卵巢综合征(PCOS)的发生。(2)携带AR基因rs6152A基因型的患者易出现PCOM。(本文来源于《贵州医药》期刊2018年07期)

许露,李燕,张泰魏[5](2018)在《逍遥散加减干预高催乳激素血症模型动物促卵泡刺激素受体的表达及意义》一文中研究指出目的探讨逍遥散加减对高催乳激素血症(HPRL)模型动物促卵泡刺激素受体(FSHR)基因的表达,以探讨其对生殖轴的影响。方法除空白组外,运用甲氧氯普胺腹腔注射制作HPRL大鼠模型。将模型大鼠随机分为模型对照组,溴隐亭组,低、中、高剂量逍遥散组,待各组完成治疗,处死,取股动脉血,采用定量PCR测定实验动物血清FSHR的表达;ELISA法测血清FSH、LH、E_2、P、T的含量。结果高剂量逍遥散组能升高血清FSHR含量,P<0.05,FSH、LH有降低趋向,E_2、P有增加趋向,各剂量组呈量效关系;但对T影响不大。结论通过实验研究,逍遥散加减可能通过改善高催乳激素血症模型动物FSHR、性激素水平,从而起到治疗目的。(本文来源于《时珍国医国药》期刊2018年03期)

汪莉,喻盈,张志安[6](2018)在《来曲唑对小鼠血清性激素水平、卵巢组织形态及促卵泡刺激素受体表达的影响》一文中研究指出目的探讨来曲唑干预后小鼠血清性激素水平、卵巢组织形态学变化及促卵泡刺激素受体(FSHR)表达的影响。方法选择39只雌性昆明小鼠作为研究对象,随机分成来曲唑组、克罗米芬组和对照组,每组13只,于动情周期前期给予不同的药物。56 h后处死小鼠,采用放射免疫半定量分析法检测血清性激素水平(E2、T),免疫组织化学和蛋白印迹的方法联合评估来曲唑对小鼠卵巢FSHR表达的影响。结果与对照组相比,来曲唑组、克罗米分组E2水平降低(P<0.01),来曲唑组与克罗米分组相比,E2水平均降低,但两组之间差异无统计学意义(P>0.05),来曲唑组T水高于克罗米分组(P<0.05)。各种细胞及各级卵泡相比,来曲唑组表达FSHR最多,克罗米分组其次,对照组最少,且各组差异有统计学意义(P<0.05)。来曲唑组FSHR蛋白相对表达水平高于克罗米分组和对照组(P<0.01),克罗米分组和对照组之间比较,差异无统计学意义(P>0.05)。结论来曲唑能促进小鼠卵巢成熟卵泡颗粒细胞FSHR的表达,为排卵期优势卵泡的排卵做了很好的准备。(本文来源于《中国妇幼保健》期刊2018年02期)

余蓉,金昊,林金菊,黄学锋[7](2017)在《重组人卵泡刺激素作用下卵泡黄素化颗粒细胞M-CSF及受体表达的临床差异》一文中研究指出目的:比较使用重组人卵泡刺激素(rFSH)后,患者卵泡黄素化颗粒细胞巨噬细胞集落刺激因子(M-CSF)及其受体(M-CSFR)mRNA表达的差异,以探讨M-CSF及其受体对卵巢反应性的影响。方法:接受体外受精治疗的96例多囊卵巢综合征(PCOS)患者和157例非PCOS患者,根据其使用r-FSH后反应性不同分为四组:即PCOS快、慢反应组和非PCOS快、慢反应组。收集成熟卵泡穿刺后黄素化颗粒细胞,采用SYBR Green荧光定量RT-PCR法检测颗粒细胞M-CSF、M-CSFR和管家基因GAPDH的mRNA表达,通过比较阈值法(CT值目的基因-CT值管家基因)进行基因相对定量。双独立样本t检验比较组间基因表达差异,并对差异有统计学意义的指标行Spearman相关分析检验。结果:各组患者r-FSH使用量无统计学差异(P>0.05)。PCOS患者整体与非PCOS患者整体比较,M-CSF和M-CSFR的mRNA定量均无统计学差异(P>0.05)。分组比较后,各组间M-CSF mRNA定量无统计学差异(P>0.05)。而PCOS慢反应组M-CSFR mRNA定量低于快反应组患者,差异有统计学意义(P=0.006)。对PCOS组颗粒细胞M-CSFR mRNA定量和r-FSH使用天数的Spearman相关分析提示,两者相关性有统计学意义(P=0.023),相关系数0.511。结论:PCOS卵巢慢反应患者对促排卵药物反应迟缓可能与其颗粒细胞M-CSFR表达减少有关。M-CSF及其受体参与影响卵巢对r-FSH的反应性。(本文来源于《中国临床药理学与治疗学》期刊2017年12期)

赵婷,席欧彦,秦瑞坪,邱玲玲,马晓玲[8](2017)在《卵泡刺激素功能肽与受体胞外区不同片段结合作用的分析》一文中研究指出【目的】卵泡刺激素(FSH)33-53肽可以与FSH受体(FSHR)结合,并激活下游信号,被作为FSH功能肽。然而其在受体上的具体结合位置还不清楚。阐明FSH33-53肽在FSHR上的结合区域,为基于FSH的疫苗设计提供依据。【方法】采用重组的FSHR胞外区(ECD)和富含亮氨酸区(LRR)及合成的FSHR9-30区分析这些FSHR的功能区域与FSH33-53的结合作用。PCR扩增得到h FSHR ECD和h FSHR LRR目的基因,构建重组质粒p ET22b-FSHR-ECD和p ET22b-FSHR-LRR,表达纯化获得蛋白FSHR-ECD和FSHR-LRR。采用多肽合成法获得FSHR9-30-KLH。通过ELISA方法检测受体片段与FSH33-53肽的结合和亲和力。【结果】获得FSHR-ECD和FSHR-LRR蛋白,其相对分子质量(Mr)分别为43和32k Da。在受体为0.5μgm L,配体为2.5μgm L时,叁种蛋白均与FSH33-53肽结合。ELISA检测受体与配体的亲和力分别为0.21×10~(-6)、0.45×10~(-6)和0.056×10~(-6)mol/L。【结论】FSHR 9-30片段与FSH33-53肽的结合较其它两个片段结合力强。(本文来源于《新疆农业科学》期刊2017年07期)

秦瑞坪,李玲霞,马晓玲,席欧彦,赵婷[9](2017)在《抗人卵泡刺激素受体多克隆抗体的制备及其对实验大鼠骨质疏松的抑制作用》一文中研究指出近年来,卵泡刺激素(follicle-stimulating hormone,FSH)在骨质疏松中的作用得到了证实。卵泡刺激素受体(FSH receptor,FSHR)在成熟的人破骨细胞及破骨细胞前体即单核细胞表面表达,成为阻断FSH作用的潜在靶点。制备了高滴度的兔抗人FSHR多克隆抗体,采用双侧去卵巢手术方法建立SD(Sprague-Dawley)大鼠骨质疏松症动物模型,观察抗FSHR抗体对大鼠实验骨质疏松症的治疗效果。结果显示,卵巢摘除(ovariectomized,OVX)大鼠经抗FSHR多抗和亮丙瑞林(leuprorelin,LE)治疗两周后,与PBS对照组相比,血清FSH和黄体酮(luteinizing hormone,LH)水平显着降低(P<0.05),而雌二醇(estrogen,E2)水平有一定升高,但结果不显着(P>0.05)。另外,骨组织化学染色显示多抗和LE治疗组大鼠骨小梁数目增加,断裂现象较少。这些结果初步表明,采用抗FSHR抗体对SD大鼠骨质疏松症具有一定的治疗作用。(本文来源于《中国生物工程杂志》期刊2017年06期)

孙曼,郭雅茹,徐永平,金秀芳,杜宜楠[10](2017)在《卵泡刺激素受体在雌性山羊颈动脉体的分布》一文中研究指出为了检测雌性山羊颈动脉体中是否存在卵泡刺激素受体(FSHR),探讨卵泡刺激素(FSH)是否可以影响雌性山羊颈动脉体的活动,本试验采用免疫组织化学SP法观察卵泡刺激素受体(FSHR)在山羊颈动脉体内的分布特点,利用IPP 6.0图像半定量分析系统分析FSHR在颈动脉体中实质细胞和非实质细胞上的表达量差异。结果显示,FSHR主要分布在颈动脉体的实质细胞(Ⅰ型细胞和Ⅱ型细胞)。Ⅰ型细胞中FSHR强阳性产物分布于细胞核,中等阳性产物分布于细胞膜,弱阳性或阴性产物分布于细胞质;Ⅱ型细胞中有强阳性产物;血管内皮细胞中有中等阳性或强阳性产物。FSHR在颈动脉体的实质细胞与非实质细胞中相对表达量呈显着性差异(P<0.05)。结果表明,证实FSHR在雌性非妊娠山羊颈动脉体内广泛表达,提示颈动脉体可能接受FSH的调节,这为研究FSH作用于非生殖系统及颈动脉体神经内分泌调节机制提供形态学依据。(本文来源于《中国兽医学报》期刊2017年05期)

卵泡刺激素受体论文开题报告

(1)论文研究背景及目的

此处内容要求:

首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景,再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题,并提出你的论文准备的观点或解决方法。

写法范例:

卵泡刺激素(FSH)是调控男女双方性腺功能的关键内分泌激素。FSH刺激男性睾丸Sertoli分化,促进睾丸发育,促进精原细胞的有丝分裂。FSH维持成人Sertoli细胞代谢,对于精子生成、生殖细胞的存活及男性生育发挥重要作用。FSH通过FSH受体(FSHR)发挥作用,FSH及FSHR基因突变及基因多态性都有可能影响FSH对靶器官的作用。本文对FSH及FSHR与男性生殖关系进行综述。

(2)本文研究方法

调查法:该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。

观察法:用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。

实验法:通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。

文献研究法:通过调查文献来获得资料,从而全面的、正确的了解掌握研究方法。

实证研究法:依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。

定性分析法:对研究对象进行“质”的方面的研究,这个方法需要计算的数据较少。

定量分析法:通过具体的数字,使人们对研究对象的认识进一步精确化。

跨学科研究法:运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。

功能分析法:这是社会科学用来分析社会现象的一种方法,从某一功能出发研究多个方面的影响。

模拟法:通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。

卵泡刺激素受体论文参考文献

[1].王舒可,郑梅玲.卵泡刺激素受体在胎盘血管形成及维持妊娠中的作用[J].国际生殖健康/计划生育杂志.2019

[2].李德邦,陈秀娟.卵泡刺激素及受体与男性生殖关系的研究进展[J].中国医师杂志.2018

[3].李玲霞,吴锦艳,曹小安,冯倩,杜国玉.卵泡刺激素受体FSHR234纳米抗体的分离纯化及多克隆抗体的制备[J].微生物学通报.2018

[4].潘莉娜,周从容,黄永利,吕晶,罗希.血清黄体生成素与卵泡刺激素比值及雄激素受体基因多态性与多囊卵巢关系的探讨[J].贵州医药.2018

[5].许露,李燕,张泰魏.逍遥散加减干预高催乳激素血症模型动物促卵泡刺激素受体的表达及意义[J].时珍国医国药.2018

[6].汪莉,喻盈,张志安.来曲唑对小鼠血清性激素水平、卵巢组织形态及促卵泡刺激素受体表达的影响[J].中国妇幼保健.2018

[7].余蓉,金昊,林金菊,黄学锋.重组人卵泡刺激素作用下卵泡黄素化颗粒细胞M-CSF及受体表达的临床差异[J].中国临床药理学与治疗学.2017

[8].赵婷,席欧彦,秦瑞坪,邱玲玲,马晓玲.卵泡刺激素功能肽与受体胞外区不同片段结合作用的分析[J].新疆农业科学.2017

[9].秦瑞坪,李玲霞,马晓玲,席欧彦,赵婷.抗人卵泡刺激素受体多克隆抗体的制备及其对实验大鼠骨质疏松的抑制作用[J].中国生物工程杂志.2017

[10].孙曼,郭雅茹,徐永平,金秀芳,杜宜楠.卵泡刺激素受体在雌性山羊颈动脉体的分布[J].中国兽医学报.2017

论文知识图

实验组卵泡刺激素受体表达(X400)卵泡刺激素受体免疫染色鉴定牛卵...对照组卵泡刺激素受体表达(X400)1-12LGR的分类A型LGRs...ODN与转染细胞直接培养对FSHR mRNA表...在脂肪组织的分布

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卵泡刺激素受体论文_王舒可,郑梅玲
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