导读:本文包含了植物抗病作用论文开题报告文献综述及选题提纲参考文献，主要关键词:NO,抗病反应,抗氧化酶,苯丙烷代谢
植物抗病作用论文文献综述
王晨[1]（2019）在《NO信号分子及其在植物抗病反应中的作用研究综述》一文中研究指出NO是一种重要的信号分子,在植物抗病反应中起重要作用,可提高抗氧化酶活性,激发苯丙烷代谢途径,刺激植物过敏反应的发生。植物体内NO产生途径有NOS产生途径、NR途径、非酶促途径3种。本文进行了综述。(本文来源于《现代园艺》期刊2019年11期）
刘同梅[2]（2018）在《海藻酸钠寡糖诱导植物抗病作用和机制的初步研究》一文中研究指出海藻酸钠寡糖(Alginate oligosaccharide,AOS)是海藻酸钠的降解产物,由α-L-甘露糖醛酸和β-D-古罗糖醛酸通过1,4-糖苷键连接,并由不同片段组成的寡聚物,具有促进植物生长、缓解非生物胁迫等作用。然而AOS诱导植物抗病方面的研究相对缺乏,限制了其在农业生产中的进一步开发应用。论文利用模式植物拟南芥和烟草,评价了AOS诱导植物抗病原细菌和病毒的作用效果;通过检测抗性指标的变化初步探索其诱导植物抗病的作用机制,为AOS抗病机理的揭示和在农业上的应用提供一定参考。研究结果如下:1.AOS可以诱导拟南芥抗Pst DC3000,在25 mg/L-200 mg/L浓度范围内,25 mg/L浓度预处理效果最佳,和对照相比,病情指数下降了35.62%,Pst DC3000在叶片内生长抑制率为78.88%。2.AOS体外对Pst DC3000的生长无抑制作用,但可以抑制Pst DC3000在拟南芥体内的繁殖,提示AOS可能是通过激活拟南芥的免疫途径来达到抗Pst DC3000的效果。3.AOS预处理拟南芥后,可影响其抗性通路。预处理后接种病原菌3 d时,抗性基因PR1和PDF1.2表达量上调,分别为对照的10.57和4.59倍,植物激素水杨酸含量上升,和对照相比,上升了20.72%。4.25 mg/L AOS预处理水杨酸途径阻断突变株Sid2后,病情指数下降,AvrPtoB和RecA的表达量下调,但与野生型对照相比,AOS诱导突变株抗病性显着下降,说明AOS可以通过诱导水杨酸途径来实现诱导抗病性。5.AOS可诱导抗性品种枯斑叁生烟草抗TMV,最佳作用浓度为50 mg/L,枯斑抑制率为19.59%,AOS同样可诱导感病品种黄榆烟草抗TMV,预处理后,局部叶和系统叶中烟草花叶病毒的外壳蛋白基因和蛋白表达量均下降,表明AOS可以诱导烟草抑制病毒在体内的繁殖和运输。(本文来源于《大连海洋大学》期刊2018-05-01）
何祖华[3]（2017）在《植物抗病及其与产量性状的交互作用》一文中研究指出抗病性改良一直是我国作物育种的主要目标之一,也是减少农药施用的唯一途径,而其中抗病基因R的分离鉴定是抗病育种的关键。以水稻为例,自1995年首次克隆水稻抗白叶枯基因Xa21以来,相继克隆了20多个抗稻瘟病基因Pi,8个抗白叶枯病基因Xa,抗水稻条纹叶枯病STV11等。但绝大部分这类R基因控制的是小种专化性抗病基因,单个基因的抗性很容易丧失,而多基因聚合很可能引起产量品质下降;此外,个别抗谱广的抗病基因也影响植物生长发育。因此发掘广谱与持久抗病基因资源、解析抗病与产量性状的交互作用是有效进行高抗高产分子育种的关键。植物抗病反应与生长发育之间存在密切的联系,这是由于多种植物激素参与对免疫的调节,激素间的相互作用导致对产量等重要农艺性状产生影响,即存在抗性的代价问题(defense cost/penalty)。我们在国际上较早以水稻和拟南芥为模型,从激素途径和细胞死亡机制上研究抗病性与发育的互作机制。发现了SA,JA与auxin等代谢与信号双向调控新机制等,证明GA与auxin是植物抗病的负调控因子,发现防卫激素JA通过抑制GA信号调控抗病性;发现受体激酶ERECTA为一个抗病抗热主效QTL等。近几年来国际上对这个问题越来越重视,但尚有有许多科学问题需要解析。我们通过多年的努力,解析了水稻Pigm位点持久抗病性与产量协调的新机制。该位点编码有2个受体蛋白PigmR和PigmS。PigmR可以对所有检测的稻瘟病菌小种都具有广谱抗病性,但同时会使水稻种子变小,产量降低。而PigmS不产生抗病性,反而可以竞争性地与PigmR结合形成异源二聚体,抑制PigmR的抗病功能,但可以提高结实率(产量)。重要的是通过长期进化和人工选择,PigmS基因受严格的表观遗传调控,导致其在叶片、茎秆等病原菌侵染的组织部位表达量很低,因此不会对PigmR的抗病功能产生大的影响。正是由于PigmS低水平的表达,为病原菌提供了一个"避难所",选择压力变小,可能减缓病原菌对PigmR的致病性的进化,因此使Pigm位点具有持久的抗病性。这为水稻抗病育种提供了有效的理论和工具。(本文来源于《第八届全国小麦基因组学及分子育种大会摘要集》期刊2017-08-07）
盛世英,周强,邱德文,杨秀芬[4]（2017）在《植物免疫蛋白制剂阿泰灵诱导小麦抗病增产效果及作用机制》一文中研究指出阿泰灵是我国自主研发的植物免疫蛋白制剂,能诱导多种植物的广谱抗性,并能促进植物生长、提高产量,但在小麦生产中尚未开展相关研究。2016年作者分别在山东省和河南省开展了阿泰灵对小麦抗病和促生长的田间试验,并初步研究了阿泰灵诱导小麦抗病的作用机制。研究结果表明,用400倍阿泰灵稀释液拌种,并分别在返青期、拔节期和扬花期进行1000倍喷雾使用,能显着提高小麦叶片的叶绿素含量、须根数和根系活力;对小麦纹枯病、白粉病和叶锈病3种病害的诱抗效果达到29.3%~64.9%;穗长、穗粒数和千粒重也显着提高,产量增加15%以上。阿泰灵喷雾处理小麦6叶期幼苗后12~24 h,POD、SOD和CAT防御酶活性提高45%,抗病相关基因PR-1、PR-2和PR-5也比未处理小麦转录表达提高10倍。以上研究结果表明,阿泰灵能有效促进小麦生长,并提高小麦抗病性;防御酶活性提高和抗病基因上调表达是阿泰灵诱导小麦抗病增产的重要作用机制之一。(本文来源于《中国生物防治学报》期刊2017年02期）
李冬月,原文霞,郑超,王栩鸣,周洁[5]（2017）在《bZIP转录因子在植物激素介导的抗病抗逆途径中的作用》一文中研究指出植物体内有一套复杂精细且交叉调控的激素信号网络,在植物应对不良环境胁迫的过程中起着至关重要的作用。bZIP转录因子作为基因表达的关键调控因子,在植物抗病抗逆相关基因的表达中行使着重要的功能。文章首先介绍了bZIP转录因子的结构和功能,阐述了其在几种主要的激素抗性调控途径中的作用机理,之后对各种激素信号通路之间的交叉调控途径及其关键调控节点蛋白进行了概括,以期阐明植物激素介导的抗性调控网络,并为新的抗性相关基因的挖掘和利用提供理论依据。(本文来源于《浙江农业学报》期刊2017年01期）
靳晓扬[6]（2016）在《N-酰基高丝氨酸内酯（AHLs）与茉莉酸信号通路在植物抗病中交互作用的研究》一文中研究指出革兰氏阴性细菌能分泌一种用于协调菌群活动的信号分子,即N-酰基高丝氨酸内酯(N-acyl-homoserine lactones,AHLs)。近年来研究证明AHLs中不仅能被细菌感知,也能被植物所感应,引起植物一系列生理活动的变化。N-3-羰基辛酰基高丝氨酸内酯(N-3-oxo-octanoyl-homoserine lactone,3OC8-HSL)是植物病原菌软腐欧文氏菌(Erwinia.carotovora.subsp.Carotovora,Ecc)产生的群体感应信号分子AHLs中的一种。前期研究表明3OC8-HSL可以促进植物主根生长。本研究的目的在于探讨3OC8-HSL是否可以调控植物的抗病性,并进一步研究其作用机制。抗病性分析表明用3OC8-HSL预处理拟南芥之后接种病原菌Ecc,病原菌在植物体内定殖数目显着低于不用3OC8-HSL预处理的,3OC8-HSL预处理拟南芥48 h诱导的抗病性最强。结果说明3OC8-HSL预处理可以激活植物防御系统,对后续病原菌的侵染快速产生抗体,降低病原菌的侵染。茉莉酸(Jasmonic acid,JA)是高等植物体内内源生长调节物质,具有广泛的生理功能,在调节植物抗病性方面发挥着重要作用。本研究发现10μM 3OC8-HSL处理能够显着提高植物体内茉莉酸的含量。进一步通过植物生理病理指标检测,比较了3OC8-HSL预处理拟南芥Col-0野生型、JA突变体coi1和jar1的抗病效果,发现与野生型相比,在JA突变体coi1和jar1植株上,用3OC8-HSL预处理诱导的对Ecc的抗性消失,基因表达分析表明,JA合成通路上的关键基因AOS、AOC、LOX2响应AHLs的处理基因表达量显着上调。暗示JA信号转导途径可能参与了3OC8-HSL的诱导抗性。qRT-PCR结果表明,3OC8-HSL预处理显着上调JA信号通路中的抗病标志基因PDF1.2、VSP1、MYC2的表达,coi1和jar1突变体体内响应JA的基因PDF1.2、MYC2和VSP2的表达都不受AHLs的影响。这些结果表明,JA及其介导的信号转导途径参与了3OC8-HSL对植物抗病性的调控。(本文来源于《河北工业大学》期刊2016-04-01）
夏斐,范佩,张明菊,夏启中[7]（2015）在《次生细胞壁在植物抗病中的作用研究进展》一文中研究指出植物对病原菌的抗性依赖于组成性和诱导性防卫屏障所形成的复杂网络。植物细胞壁是病原菌成功侵染植物组织必须克服的障碍之一。传统观点认为植物细胞壁只是一个被动的屏障,但最新研究认为细胞壁是一种调控组成性和诱导性防卫反应机制的动力学结构,而且可以作为信号分子源启动植物的内在免疫反应。通过破坏相关的合成蛋白质而进行的细胞壁完整性的修饰或重构也会对植物的抗病性产生影响。对植物细胞壁抗病的功能进行了系统的介绍,并重点探讨了木质素在抗病过程中的作用。(本文来源于《湖北农业科学》期刊2015年23期）
俞禄珍,王晨,陆苗[8]（2015）在《ROS信号分子及其在植物抗病反应中的作用》一文中研究指出综述了ROS在植物抗病反应中的机理及作用。(本文来源于《陕西林业科技》期刊2015年02期）
刘正旭,霍永久,占今舜[9]（2014）在《植物提取物在提高仔猪抗病力上的应用及作用原理》一文中研究指出众多研究表明植物提取物(PE)可作为仔猪断奶阶段的生长促进剂,替代抗生素。总结不同的PE在仔猪生产中的利用情况,并从抑制有害微生物、免疫增强、抗氧化、代谢调控等层面阐述了PE对仔猪的作用原理。(本文来源于《猪业科学》期刊2014年11期）
邓勋,宋小双,尹大川,宋瑞清,Ilan,Chet[10]（2014）在《引进木霉菌株对药用植物刺五加和五味子苗木的抗病促生作用》一文中研究指出通过与立枯丝核菌(Rhizoctonia solani)进行对峙培养,同时测定木霉菌非挥发性和挥发性次生代谢产物对丝核菌菌丝生长的影响,对8株木霉菌进行了室内筛选;制备T-43木霉菌剂,对刺五加和五味子苗木立枯病进行室外防治试验,并测定了木霉菌对苗木的促生抗逆作用。试验结果表明:在对峙培养及发酵液抑菌试验中,各菌株及其次生代谢产物对立枯丝核菌均有不同程度的抑制作用,对峙培养中,T-43对丝核菌的相对抑制系数为2.5;T-43发酵液对丝核菌的抑制率为71.15%,可以强烈抑制丝核菌的生长并具有热稳定性;绿木霉菌株T-43在显着控制刺五加和五味子立枯病发生的同时,可以显着促进苗木的生长、增加生物量和抗逆性,并提高土壤微生物种群数量和稳定性。(本文来源于《吉林农业大学学报》期刊2014年02期）
植物抗病作用论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
海藻酸钠寡糖(Alginate oligosaccharide,AOS)是海藻酸钠的降解产物,由α-L-甘露糖醛酸和β-D-古罗糖醛酸通过1,4-糖苷键连接,并由不同片段组成的寡聚物,具有促进植物生长、缓解非生物胁迫等作用。然而AOS诱导植物抗病方面的研究相对缺乏,限制了其在农业生产中的进一步开发应用。论文利用模式植物拟南芥和烟草,评价了AOS诱导植物抗病原细菌和病毒的作用效果;通过检测抗性指标的变化初步探索其诱导植物抗病的作用机制,为AOS抗病机理的揭示和在农业上的应用提供一定参考。研究结果如下:1.AOS可以诱导拟南芥抗Pst DC3000,在25 mg/L-200 mg/L浓度范围内,25 mg/L浓度预处理效果最佳,和对照相比,病情指数下降了35.62%,Pst DC3000在叶片内生长抑制率为78.88%。2.AOS体外对Pst DC3000的生长无抑制作用,但可以抑制Pst DC3000在拟南芥体内的繁殖,提示AOS可能是通过激活拟南芥的免疫途径来达到抗Pst DC3000的效果。3.AOS预处理拟南芥后,可影响其抗性通路。预处理后接种病原菌3 d时,抗性基因PR1和PDF1.2表达量上调,分别为对照的10.57和4.59倍,植物激素水杨酸含量上升,和对照相比,上升了20.72%。4.25 mg/L AOS预处理水杨酸途径阻断突变株Sid2后,病情指数下降,AvrPtoB和RecA的表达量下调,但与野生型对照相比,AOS诱导突变株抗病性显着下降,说明AOS可以通过诱导水杨酸途径来实现诱导抗病性。5.AOS可诱导抗性品种枯斑叁生烟草抗TMV,最佳作用浓度为50 mg/L,枯斑抑制率为19.59%,AOS同样可诱导感病品种黄榆烟草抗TMV,预处理后,局部叶和系统叶中烟草花叶病毒的外壳蛋白基因和蛋白表达量均下降,表明AOS可以诱导烟草抑制病毒在体内的繁殖和运输。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
植物抗病作用论文参考文献
[1].王晨.NO信号分子及其在植物抗病反应中的作用研究综述[J].现代园艺.2019
[2].刘同梅.海藻酸钠寡糖诱导植物抗病作用和机制的初步研究[D].大连海洋大学.2018
[3].何祖华.植物抗病及其与产量性状的交互作用[C].第八届全国小麦基因组学及分子育种大会摘要集.2017
[4].盛世英,周强,邱德文,杨秀芬.植物免疫蛋白制剂阿泰灵诱导小麦抗病增产效果及作用机制[J].中国生物防治学报.2017
[5].李冬月,原文霞,郑超,王栩鸣,周洁.bZIP转录因子在植物激素介导的抗病抗逆途径中的作用[J].浙江农业学报.2017
[6].靳晓扬.N-酰基高丝氨酸内酯（AHLs）与茉莉酸信号通路在植物抗病中交互作用的研究[D].河北工业大学.2016
[7].夏斐,范佩,张明菊,夏启中.次生细胞壁在植物抗病中的作用研究进展[J].湖北农业科学.2015
[8].俞禄珍,王晨,陆苗.ROS信号分子及其在植物抗病反应中的作用[J].陕西林业科技.2015
[9].刘正旭,霍永久,占今舜.植物提取物在提高仔猪抗病力上的应用及作用原理[J].猪业科学.2014
[10].邓勋,宋小双,尹大川,宋瑞清,Ilan,Chet.引进木霉菌株对药用植物刺五加和五味子苗木的抗病促生作用[J].吉林农业大学学报.2014