导读:本文包含了质膜水孔蛋白论文开题报告文献综述、选题提纲参考文献及外文文献翻译，主要关键词:蛋白,基因,干旱,白花,蒲公英,大豆,菌根。
质膜水孔蛋白论文文献综述
王一鸣,汪湖,龙胜举,赵英鹏,陈延[1]（2017）在《干旱胁迫对蒲公英渗透调节物质、酶保护系统及质膜水孔蛋白PIP2-3基因表达的影响》一文中研究指出为了揭示蒲公英在干旱胁迫下渗透调节和酶保护系统的作用机理以及质膜水孔蛋白PIP2-3基因的表达特征,采用盆栽控水试验,研究了不同干旱胁迫RWC=(90±5)%、RWC=(75±5)%、RWC=(50±5)%下蒲公英渗透调节物质、酶保护系统以及质膜水孔蛋白基因的相关表达。结果表明:随着干旱胁迫的加重,蒲公英叶片中的可溶性糖、可溶性蛋白、游离脯氨酸的含量显着增加,超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化物酶(POD)、过氧化氢酶(CAT)的活性显着提高,在轻度胁迫(MS)中呈持续上升的趋势,重度胁迫(SS)中则呈现先升高后下降的趋势(可溶性糖除外);质膜水孔蛋白PIP2-3基因的相对表达量上调,轻度胁迫(MS)显着高于重度胁迫(SS)。复水7 d后,渗透调节物质的积累以及SOD的含量下降,但仍显着高于CK,POD、CAT的含量以及质膜水孔蛋白PIP2-3基因的相对表达量恢复正常,说明在干旱胁迫条件下蒲公英通过增加渗透调节物质的积累,提高酶保护系统的活性来增强植株的抗逆性,上调质膜水孔蛋白基因的相对表达量来加强水分运输能力。(本文来源于《华北农学报》期刊2017年04期）
冉昆,孙晓莉,张勇,王宏伟,魏树伟[2]（2016）在《杜梨质膜水孔蛋白基因PbPIP1的克隆与表达分析》一文中研究指出采用RT-PCR和RACE技术从杜梨(Pyrus betulifolia)根系中克隆得到1个质膜内在蛋白(plasma membrane intrinsic proteins,PIPs)类的水孔蛋白基因全长c DNA序列,命名为Pb PIP1。该基因全长为1 297 bp,包含1个870 bp的完整开放阅读框,编码289个氨基酸。氨基酸序列分析表明,Pb PIP1含有水孔蛋白家族高度保守的2个天冬酰胺-哺氨酸-丙氨酸基序(Asn-Pro-Ala,NPA)基序和6个跨膜区,并具有高等植物特有的PIPs高度保守序列。聚类分析表明该基因编码蛋白属于PIP1亚家族。基因表达分析结果表明,Pb PIP1在杜梨根、茎、叶中均有表达,在根中表达量最高,茎中最少。20%PEG处理时,该基因在杜梨根系中的表达水平随胁迫时间的延长先上升后降低;但在4°C低温、100 mmol·L~(-1) Na Cl处理时该基因的表达水平差异不明显。这说明Pb PIP1可能主要在杜梨根系中发挥作用,其表达丰度可能与杜梨的抗旱性密切相关。(本文来源于《植物生理学报》期刊2016年06期）
汪湖[3]（2016）在《干旱胁迫下蒲公英生理响应与质膜水孔蛋白基因表达》一文中研究指出蒲公英(Taraxacum mongolicum Hand.-Mazz.),为菊科多年生草本植物,具有十分重要的营养价值和药用价值。近年来随着人们对野菜的青睐,特别是像蒲公英这样具有食疗功能的野生蔬菜,已广泛引起医学和营养方面专家的重视,随着全球气候变暖,干旱逆境问题日趋严重。干旱逆境成为限制植物生长,降低作物产量的主要问题之一[2];本研究以蒲公英作为研究对象,设置3个土壤含水量水平(相对含水量),分别为充分供水(CK,RWC=90%±5%)、中度胁迫(MS,RWC=75±5%)、重度胁迫(SS,RWC=50±5%),持续进行9d干旱胁迫,同时第9d后进行复水,复水后第7d进行复水指标测定,对蒲公英生理及分子机制进行系统研究,主要结果如下：(1)中度胁迫下,蒲公英根系活力随着处理时间的延长而增大,重度胁迫蒲公英根系活力水时间延长先增大后减小。并在重度胁迫第6d时达到峰值,高于这一水平,根系活力减小,根冠比增加。复水后根系活力恢复正常水平。胁迫对根系生长具有促进作用,胁迫后的复水,会使蒲公英根系获得补偿效应,能够更快的恢复正常状态。根冠比复水后不显着下降,叶片依然存在锯齿状边缘,证明干旱对叶片的影响较大,虽然对生理状态没有造成严重破坏,但是叶片较难恢复至正常状态,影响蒲公英可食用部分价值。(2)干旱胁迫下,蒲公英SOD、POD、CAT活性呈现先升后降的变化趋势,峰值出现在MS第9d,SS第6d。复水后MS恢复正常水平。活性氧清除系统能够在受到胁迫后较长时间内维持平衡,植物不容易受到过氧化物的损害。在复水后重度胁迫维持较高值,中度胁迫恢复至未受到胁迫状态。随着胁迫时间延长和胁迫程度的增大,蒲公英脯氨酸、可溶性糖和可溶性蛋白均出现不同程度的上升。复水后均高于对照组。(3)随着干旱胁迫时间增加,蒲公英叶绿素a、b含量持续增加,叶绿素a、b之间的比值也发生复杂变化。在胁迫第9d,MS/SS叶绿素a、b含量高于CK,增加了叶片的光合能力,但是总叶绿素含量低于CK,有可能总叶绿素含量具有一定的滞后性。复水后叶绿素a、总叶绿素没有变化,只有叶绿素b出现了一定的补偿效应。(4)Fo的变化趋势与叶绿素a相近,推测这种相关性这可能与逆境胁迫类型和植物种类有关。蒲公英在受到中度胁迫时PSⅡ受到影响,随着时间增加PSⅡ潜在活性中心受到破坏。重度胁迫下PSⅡ潜在活性中心在第6d时开始受到破坏,热耗散升高,光合机构损坏,使蒲公英叶片将所捕获的光能转化为化学能的能力渐弱。(5)对照组Pn维持稳定,SS与MS随着胁迫时间延长出现下降的趋势。并且SS下降趋势远大于MS,复水后出现了上升的情况,可见有着一定的补偿效应。气孔导度呈现不规律的变化,但是当Gs值处于低点时,蒸腾速率同样也是处于低点,可见两者之间具有一定复杂的关系。Tr蒸腾速率与胁迫时间呈现正相关关系,胁迫时间越长,蒸腾速率越低,植株利用降低蒸腾速率控制水分蒸发,减少根系压力。复水后MS与SS上升至CK水平,也证明了植株在胁迫过程中没有受到严重的破坏。(6)随着胁迫浓度增大,CCP与CSP增大,Amax减小,Rp减小,初始羧化效率降低,可见受到干旱胁迫后,蒲公英光和能力减弱,CCP的上升则体现干旱胁迫越严重,植株消耗越严重,与叶片干物质降低有着一致的表现。复水后SS、MS最大净光合速率没有上升,CCP与CSP也维持在同样的水平,复水后具有补偿效应。(7)受到胁迫后,PIP2-3相对表达量与对照组相比显着上升。但是MS组表达量显着高于SS组,可见在一定程度的干旱胁迫下,蒲公英PIP2-3有很好的表达,能够通过提高质膜水孔蛋白含量与活性,增加水分交换,减轻干旱对植株的影响,而受到严重干旱时,可能其活性受到抑制。复水后都恢复至CK水平,可见在复水后,干旱对蒲公英的影响得到了缓解,蒲公英质膜水孔蛋白活性降低。(本文来源于《四川农业大学》期刊2016-05-01）
张燕,李娟,姚青,陈杰忠,胡又厘[4]（2014）在《枇杷质膜水孔蛋白基因EjPIP1的克隆及AM真菌对其表达的影响》一文中研究指出【目的】克隆‘早钟6号'枇杷(Eriobotrya japonica‘Zaozhong 6')的一个质膜水孔蛋白(plasma membrane intrinsic protein,PIP)基因,分析其序列特征,研究接种丛枝菌根(Arbuscular mycorrhizal,AM)真菌对枇杷水分利用效率(water use efficiency,WUE)及对质膜水孔蛋白基因表达模式的影响。【方法】以‘早钟6号'枇杷实生苗为材料,通过盆栽试验,设置2个处理(AM和NM),5个重复,利用光合测定系统对叶片水平上水分利用效率进行测定;采用RT—PCR和RACE技术克隆该基因的cDNA全长,结合生物信息学软件对其序列特征进行分析,利用实时荧光定量PCR(Real time—PCR)分析接种AM真菌后该基因在枇杷叶片和根中的表达模式。【结果】在有效的光合同化时间(7:00—17:00)内,接种AM真菌显着的提高了枇杷的水分利用效率。克隆得到枇杷质膜水孔蛋白基因EjPIP1(GenBank登录号:JX041 627),cDNA全长为1 142 bp,编码区含861 bp,共编码286个氨基酸。氨基酸序列分析表明,EjPIP1具有水孔蛋白家族高度保守的2个NPA(Asn—Pro—Ala,天冬氨酸-脯氨酸-丙氨酸)基序。同源性分析显示,枇杷EjPIP1氨基酸序列与已报道的苹果(Malus domestica)、桃(Prunus persica)和智利草莓(Fragaria chiloensis)等高等植物的氨基酸序列同源性很高,分别为97%、92%和90%。Rea1 time-PCR分析结果证实,EjPIP1在枇杷叶片和根中均有表达,并且叶片中的相对表达量略高于根中。正常供水条件下,接种AM真菌后,该基因在根中表达上调,在叶片中表达下调。【结论】接种AM真菌提高了‘早钟6号'枇杷叶片水平上水分利用效率。从枇杷叶片中克隆得到了一个质膜水孔蛋白类的基因EjPIP1,实时荧光定量PCR分析表明该基因在枇杷叶片和根中表达受AM真菌的影响,该基因的表达模式有利于提高AM植株的水分利用效率。(本文来源于《中国农业科学》期刊2014年07期）
林燕飞,李红梅,丁岳练,黄新敏,冼锡金[5]（2013）在《唐菖蒲质膜水孔蛋白基因GhPIP1;1的克隆及表达分析》一文中研究指出采用 RT-PCR 和 RACE 技术从唐菖蒲(Gladiolus hybridus‘Eerde’)花瓣中克隆得到 1 个质膜内在蛋白(plasma membrane intrinsic proteins,PIPs)类的水孔蛋白基因,命名为 GhPIP1;1。该基因 cDNA全长 1 130 bp,包含 867 bp 完整开放阅读框(ORF),编码 288 个氨基酸。克隆和分析相应的 gDNA 序列(2 098 bp)表明,其包含由 4 个外显子和 3 个内含子组成的编码区序列。氨基酸序列分析表明 GhPIP1;1具有水孔蛋白家族高度保守的 2 个 NPA(Asn-Pro-Ala)基序。同源性分析显示 GhPIP1;1 氨基酸序列与同科的荷兰鸢尾(Iris hollandica)PIP1 氨基酸序列的同源性达 94%。半定量 RT-PCR 分析表明,GhPIP1;1在唐菖蒲花瓣、雄蕊、雌蕊、茎、苞片和叶片等均有表达,但表达量以花瓣中最高,叶片中最低;GhPIP1;1 在花蕾至花朵盛开期间的表达水平较高且变化不明显,但在花朵盛开后的萎蔫过程中表达水平明显降低。(本文来源于《园艺学报》期刊2013年01期）
张佳佳[6]（2012）在《沙地雀麦质膜水孔蛋白基因（BiPIP）和Actin基因克隆与序列分析》一文中研究指出植物水孔蛋白在植物体内形成水分选择性运输通道,介导胞内或胞间的水分跨膜运输,调节植物体内的水分平衡,对于提高克隆植物水分生理整合及抗盐、抗旱性可能发挥着重要作用。研究以沙地雀麦(Bromus ircutensis Kom.)为材料,通过反转录聚合酶链式反应(RT-PCR)和快速分离cDNA末端技术(RACE),克隆得到沙地雀麦的BiPIP1-1基因和Actin基因的全长cDNA序列,对其进行生物信息学分析。主要结论如下：BiPIP1-1基因全长cDNA序列为1077bp,包含54bp的5’端非编码区(5' UTR),156bp的3’端非编码区(3'UTR),867bp的完整的开放阅读框,编码288个氨基酸。BiPIP1-1具有MIP家族的信号序列和质膜水孔蛋白基因的特征信号序列。系统进化树结果显示,BiPIP1-1属于PIP1亚家族成员,与大麦水孔蛋白(HvPIP1-1)的亲缘关系最近。推测的BiPIP1-1基因叁级结构中包含6个跨膜结构域(Ⅰ～Ⅵ,通过五个亲水环相连),B环和E环各形成半个跨膜螺旋(HB.HE),分别从膜的两侧折向膜内,2个NPA基序位于中心。对沙地雀麦质膜水孔蛋白基因的克隆有助于从分子水平研究其在横走根茎中的表达及水分在沙地雀麦生理整合过程中的影响机理。BiAct基因全长cDNA序列为1310bp,包含44bp的5’端非编码区(5'UTR),135bp的3’端非编码区(3' UTR),1131bp的完整的开放阅读框,编码376个氨基酸。BiAct中含有多个Actin基因家族的特异性结合位点,包括ATP结合位点、凝溶胶结合蛋白位点、抑制结合蛋白位点等。系统进化树结果显示,沙地雀麦肌动蛋白(BiAct)与高梁肌动蛋白(ZmAct)的亲缘关系最近。沙地雀麦Actin基因的分离为沙地雀麦其它基因的表达和调控研究提供了内参基因。(本文来源于《内蒙古农业大学》期刊2012-06-01）
郝晓红[7]（2012）在《大针茅质膜水孔蛋白亚家族PIP基因cDNA序列的克隆及分析》一文中研究指出以大针茅(Stipa grandis P.Smirn)为建群的群落是内蒙古中东部地区重要的草场,具有不可忽视的生态和经济意义,水分是影响大针茅草原植物分布和生长发育的主要限制因子。本研究以大针茅为材料,通过反转录聚合酶链式反应(RT-PCR)和快速分离cDNA末端技术(RACE),克隆大针茅质膜水孔蛋白基因(plasma membrance intrinsic protein)全长cDNA,并对其编码的蛋白进行了生物信息学分析和结构的预测。目的在于揭示PIP在大针茅水分利用中的机制奠定基础。主要研究结果如下：根据已公布的同源物种PIP基因保守区序列设计引物,结合RACE技术克隆得到1条SgPIP2和2条SgPIP1全长cDNA,分别命名为SgPIP2-1、SgPIP1-4和SgPIP1-5。SgPIP2-1cDNA长1066bp,864bp的开放阅读框,编码288个氨基酸。SgPIP1-4cDNA长1054bp,含有864bp的开放阅读框,编码288个氨基酸。SgPIP1-5cDNA长1053bp,含有867bp的开放阅读框,编码289个氨基酸。SgPIP2-1、SgPIP1-4和SgPIP1-5与其它同源物种核苷酸序列的Blast比对表明,SgPIP2-1与大麦HvPIP2-1的进化关系最近为96%;SgPIP1-4与玉米ZmPIP1-4的同源性最近为83%;SgPIP1-5与大麦HvPIP1-5的同源性最近为85%。SgPIP2-1、 SgPIP1-4和SgPIP1-5推导的氨基酸序列和大针茅SgPIP1-1、SgPIP1-2、SgPIP1-3、禾本科PIPs基因家族构建系统进化树,结果表明,.SgPIP2-1为PIP2类基因亚家族成员,SgPIP1-4和SgPIP1-5为PIP1类基因亚家族成员。氨基酸序列的生物信息学分析表明,SgPIP2-1、SgPIP1-4和SgPIP1-5具有MIP家族的信号序列SGXHXNPAVT,同时具有质膜水通道蛋白的特征信号序列GGGANXXXXGY和TGI/TNPARSL/FGAAI/VI/VF/YN.疏水／亲水性和跨膜结构域的预测和分析表明,SgPIP2-1、SgPIP1-4和SgPIP1-5为疏水性蛋白,为典型膜蛋白的特征。蛋白质叁级结构的预测表明,SgPIP2-1、SgPIP1-4和SgPIP1-5的6个跨膜a-螺旋和5个亲水Loop环连接,中间有两个嵌入但不贯穿膜的短α-螺旋几乎顶对顶放置。在这两个短α-螺旋相对的顶端各有1个在所有水通道蛋白家族中都保守的Asn-Pro-Ala(NPA)氨基酸单元。(本文来源于《内蒙古农业大学》期刊2012-06-01）
王晓波,解天然,潘陈陈,华宿南[8]（2010）在《大豆质膜内在水孔蛋白的生物学功能预测》一文中研究指出[目的]利用生物信息学方法对大豆质膜内在水孔蛋白(GmPIP)的亚细胞定位、跨膜区、信号肽和磷酸化位点进行预测,为基因的功能研究提供参考。[方法]从干旱胁迫后的抗旱大豆品种晋豆21的叶片中克隆出GmPIP基因,利用PSLpred、Protcomp Version8.0、WoLF PSORT、CELLOv2.5等亚细胞预测工具进行亚细胞定位预测;利用TMHMMServerv.2.0进行蛋白跨膜区分析;利用NetPhos2.0 Server进行磷酸化位点分析;利用SignalP3.0 Server程序进行信号肽分析。[结果]综合4种工具的预测结果表明,GmPIP蛋白包含6个跨膜区,亚细胞定位预测表明该蛋白位于细胞质膜上,发现该蛋白的第254个氨基酸是一个潜在的糖基化位点和13个磷酸化位点,该蛋白没有明显的信号肽结构。[结论]利用不同方法进行的生物信息学分析结果可相互验证,生物信息学可以对未知蛋白进行初步的功能预测,有助于确定后续试验的方向。(本文来源于《安徽农业科学》期刊2010年34期）
董玉芝,杨传平,张道远,王玉成[9]（2006）在《白花柽柳质膜水孔蛋白基因克隆及序列分析》一文中研究指出植物水孔蛋白在植物体内形成水选择性运输通道,在植物种子萌发、细胞伸长、气孔运动、受精等过程中调节水分的快速跨膜运输。有的水孔蛋白还在干旱胁迫应答中起重要作用。本文根据白花柽柳的PEG6000胁迫处理构建的SSH消减文库的水孔蛋白基因表达序列标签(EST),设计基因特异性引物进行5′RACE,克隆出一个1043bp的核苷酸序列。应用生物信息学软件进行分析,预测该序列编码287个氨基酸,具有6个跨膜区,有MIP家族信号序列SGXHXN-PAVT,高等植物PIP高度保守序列GGGANXXXXGY和TGI/TNPARSL/FGAAI/VI/VF/YN,这是质膜水孔蛋白基因的典型的结构特征。经NCBI比对,与Arabidopsis thaliana(MIP-C),同源性达到95%,预测该蛋白的相对分子量是30·9KD,理论等电点是8·84。(本文来源于《植物研究》期刊2006年04期）
董玉芝[10]（2006）在《渗透胁迫下白花柽柳SSH文库构建及质膜水孔蛋白基因克隆》一文中研究指出地球上约叁分之一土地属于干旱区或半干旱区,在这些地方,缺水已成为制约农林业发展的瓶颈,严重影响人类的生存和发展。深入研究生长在干旱地区的植物的抗旱机理,克隆与抗旱相关的基因,对于大幅度提高干旱地区的生产潜力有重要的战略意义。本研究正是以此为目的,将新疆白花柽柳用终浓度25%(WN)的聚乙二醇6000进行胁迫处理,取其小枝为试材,利用抑制性消减技术(SSH)构建cDNA文库,分析在渗透胁迫下,基因表达情况。根据文库信息,用RACE技术克隆与抗旱相关的全长基因,探讨白花柽柳的抗渗透胁迫分子机理,为抗旱分子育种工作奠定理论和物质基础。 随机挑取SSH文库的288个阳性克隆进行测序,共获得207条有效的序列,已登录GenBank,登录号为EB187088-EBl87295。对98个Unique EST序列进行BlastX分析,有79个EST与已知功能的基因序列相似,19个与未知功能的基因相似。对该文库进行GO分类,使我们从不同角度理解98个Unique序列在细胞组件、分子功能和生物学途径中的作用。根据这些EST所代表的基因的生理生化作用,按功能将其分为10类。其中有52个基因与渗透胁迫关系密切,对它们进行了分析讨论。柽柳的抗渗透胁迫过程涉及信号转导与基因的表达调控、渗透胁迫物质的合成、防御反应、转运作用与离子平衡、活性氧清除、救援、防御蛋白合成、修复和保护光合系统等多种途径的综合作用。 获得与抗渗透胁迫密切相关的G蛋白类(EB187186、EB187233、EB187126)、钙网蛋白(EB187218)、丝氨酸/苏氨酸激酶(EB187235)、钙结合EF家族蛋白(EB187165)、钙依赖蛋白激酶(EB187146)、腺苷酸环化酶关联蛋白(EB187203)、MAP3Ka(EB187182)、海藻糖-6-磷酸合酶(EB187156)、脱水素DHN6(EB187153)、α-甘露糖苷酶(EB187148)、脂质转运蛋白(EB187132)、质膜水通道蛋白(EB187092)、过氧化氢酶(EB187294)、eIF1(EB187220)、翻译起始因子相似蛋白(EB187205)、SKP1蛋白(EB187159)、苹果酸脱氢酶(EB187089)、类亮氨酸拉链蛋白(EB187102)、类锌指蛋白(EB187252)等重要基因的遗传信息。 利用RACE技术从渗透胁迫处理的白花柽柳的小枝中克隆一个全长质膜水孔蛋白基因,该基因包含1043bp核苷酸序列,其中70bp前导序列,864bp的开放阅读框及109bp的3′非编码区,编码287个氨基酸,分子量约30.9KD,命名为TaAQP,GenBank登录号DQ660891。 TaAQP具有MIP基因家族序列的信号序列HINPAVTFG,并且含有高等植物质膜水孔蛋白的特征序列GGGANXXXXGY和TGI/TNPARSL/FGAAI/VI/VF/VN;经预测具有6个跨膜区,其氨基酸残基与MIP蛋白保守区序列100%一致,预测该蛋(本文来源于《东北林业大学》期刊2006-04-01）
质膜水孔蛋白论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
采用RT-PCR和RACE技术从杜梨(Pyrus betulifolia)根系中克隆得到1个质膜内在蛋白(plasma membrane intrinsic proteins,PIPs)类的水孔蛋白基因全长c DNA序列,命名为Pb PIP1。该基因全长为1 297 bp,包含1个870 bp的完整开放阅读框,编码289个氨基酸。氨基酸序列分析表明,Pb PIP1含有水孔蛋白家族高度保守的2个天冬酰胺-哺氨酸-丙氨酸基序(Asn-Pro-Ala,NPA)基序和6个跨膜区,并具有高等植物特有的PIPs高度保守序列。聚类分析表明该基因编码蛋白属于PIP1亚家族。基因表达分析结果表明,Pb PIP1在杜梨根、茎、叶中均有表达,在根中表达量最高,茎中最少。20%PEG处理时,该基因在杜梨根系中的表达水平随胁迫时间的延长先上升后降低;但在4°C低温、100 mmol·L~(-1) Na Cl处理时该基因的表达水平差异不明显。这说明Pb PIP1可能主要在杜梨根系中发挥作用,其表达丰度可能与杜梨的抗旱性密切相关。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
质膜水孔蛋白论文参考文献
[1].王一鸣,汪湖,龙胜举,赵英鹏,陈延.干旱胁迫对蒲公英渗透调节物质、酶保护系统及质膜水孔蛋白PIP2-3基因表达的影响[J].华北农学报.2017
[2].冉昆,孙晓莉,张勇,王宏伟,魏树伟.杜梨质膜水孔蛋白基因PbPIP1的克隆与表达分析[J].植物生理学报.2016
[3].汪湖.干旱胁迫下蒲公英生理响应与质膜水孔蛋白基因表达[D].四川农业大学.2016
[4].张燕,李娟,姚青,陈杰忠,胡又厘.枇杷质膜水孔蛋白基因EjPIP1的克隆及AM真菌对其表达的影响[J].中国农业科学.2014
[5].林燕飞,李红梅,丁岳练,黄新敏,冼锡金.唐菖蒲质膜水孔蛋白基因GhPIP1;1的克隆及表达分析[J].园艺学报.2013
[6].张佳佳.沙地雀麦质膜水孔蛋白基因（BiPIP）和Actin基因克隆与序列分析[D].内蒙古农业大学.2012
[7].郝晓红.大针茅质膜水孔蛋白亚家族PIP基因cDNA序列的克隆及分析[D].内蒙古农业大学.2012
[8].王晓波,解天然,潘陈陈,华宿南.大豆质膜内在水孔蛋白的生物学功能预测[J].安徽农业科学.2010
[9].董玉芝,杨传平,张道远,王玉成.白花柽柳质膜水孔蛋白基因克隆及序列分析[J].植物研究.2006
[10].董玉芝.渗透胁迫下白花柽柳SSH文库构建及质膜水孔蛋白基因克隆[D].东北林业大学.2006
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