导读:本文包含了天门冬酰胺酶论文开题报告文献综述、选题提纲参考文献及外文文献翻译，主要关键词:天门冬,酰胺,环糊精,纳米,稳定性,丙烯酰胺,拉德。
天门冬酰胺酶论文文献综述
高晓艳,刘梅,田小清,吕润林,鲁英娟[1]（2019）在《Wnt信号通路抑制对急性白血病天门冬酰胺酶耐药性的影响》一文中研究指出目的:探讨Wnt信号通路抑制对急性淋巴细胞白血病(ALL)天门冬酰胺酶(Asp)耐药性的影响。方法:人ALL细胞株THP-1分为对照组、Asp组与si-Wnt组,Asp组与si-Wnt组分别转染siRNA阴性对照与Wnt siRNA,转染后48 h,两组均加入Asp(终浓度为0.25μM),对照组只加生理盐水。MTT法检测细胞增殖,流式细胞仪检测细胞凋亡与细胞周期,Western-blot法检测蛋白表达水平。结果:Asp加药后24 h、48 h、72 h,si-Wnt组细胞增殖抑制率和细胞凋亡率均高于对照组和Asp组,且Asp组高于对照组(P<0.05)。Asp加药后72 h,si-Wnt组的G0/G1期细胞比例、Wnt及AKT蛋白表达均低于对照组与Asp组,Asp组低于对照组(P<0.05)。而si-Wnt组G2/M期细胞比例高于对照组与Asp组,且Asp组高于对照组(P<0.05)。结论:Wnt信号通路抑制可降低ALL细胞对Asp的耐药性,抑制AKT蛋白的表达,阻滞细胞周期,促进ALL细胞的凋亡,抑制其增殖。(本文来源于《川北医学院学报》期刊2019年05期）
张岩,许友强,周婷婷,李宁,李雨艳[2]（2018）在《L-天门冬酰胺酶两种工艺路线探讨》一文中研究指出在大自然中,L-天门冬酰胺酶主要存在于动物、植物和微生物中,是利用大肠杆菌进行发酵法而生产的。L-天门冬酰胺酶是一种酰胺基水解酶,在血液中能将L-天门冬酰胺酶的酰胺基进行水解,并生成天门冬氨酸和氨,由于繁殖活跃的白细胞摄取不到足够量的L-天门冬酰胺而受到生长抑制,从而能起到治疗白血病的功效。通过两种工艺路线进行叙述与探讨,结论得出优化后的工艺路线更有利于天冬酰胺酶的保存和操作。(本文来源于《世界最新医学信息文摘》期刊2018年96期）
陈卓静,关亚飞,丁城,吴茜[3]（2017）在《葡萄糖-天门冬酰胺体系中丙烯酰胺的生成规律研究》一文中研究指出对葡萄糖-天门冬酰胺(Glu-Asn)模拟体系中丙烯酰胺的生成规律进行了研究。探讨了氨基酸种类、反应底物摩尔比例、加热时间、加热温度和pH等单因素对丙烯酰胺生成量的影响。选取加热时间、加热温度和pH进行正交试验优化得到丙烯酰胺的最大生成量条件:0.1mol/L的等摩尔比Glu-Asn体系溶液于180℃(油浴)、pH 8.0(PBS)的条件下加热30min,丙烯酰胺的生成量为(164.80±13.26)nmol,在此基础上进行进一步的抑制作用研究。(本文来源于《中国调味品》期刊2017年12期）
万胜利,刘煜莹,李瑶,何丹,张景勍[4]（2017）在《壳聚糖修饰的L-天门冬酰胺酶脂质体血浆稳定性及药动学的初步研究》一文中研究指出目的考察壳聚糖修饰的L-天门冬酰胺酶脂质体的血浆稳定性及药动学特性。方法血浆稳定性:于不同时间点,分别测定L-天门冬酰胺酶和壳聚糖修饰的L-天门冬酰胺酶脂质体在大鼠空白血浆中的活性。大鼠静脉注射L-天门冬酰胺酶和壳聚糖修饰的L-天门冬酰胺酶脂质体后,分别考察其药动学特性。采用DAS药动学软件计算药动学参数。结果在空白血浆中,壳聚糖修饰的L-天门冬酰胺酶脂质体的活性高于L-天门冬酰胺酶;壳聚糖修饰的L-天门冬酰胺酶脂质体的活性-时间曲线下面积(AUC_(0-48 h))约为L-天门冬酰胺酶的3.3倍,壳聚糖修饰的L-天门冬酰胺酶脂质体的平均滞留时间(MRT_(0-48 h))约为ASP的2.3倍。结论壳聚糖修饰的L-天门冬酰胺酶脂质体能提高L-天门冬酰胺酶的血浆稳定性及生物利用度。(本文来源于《中国药学杂志》期刊2017年19期）
崔凤午,王佐成,喻小继,高峰,闫红彦[5]（2017）在《基于氨基作氢迁移桥梁天门冬酰胺的旋光异构机理及水的作用》一文中研究指出采用密度泛函理论的B3LYP方法、微扰论的MP2方法和自洽反应场(SCRF)理论的smd模型方法,研究了天门冬酰胺分子2个稳定构型的旋光异构裸反应机理、水分子的催化作用及水溶剂化效应.反应通道研究发现:构型1有2条通道a和b,a通道的第一基元反应质子迁移与羧基异构同时进行,是协同机理;b通道羧基先异构而后质子迁移,是分步机理.构型2有1条通道,是质子先以氨基氮为桥从手性碳的一侧迁移到另一侧,然后羧基和氨基再异构.势能面计算表明:构型1的主反应通道是b,决速步自由能垒为252.7kJ·mol~(-1);构型2的决速步自由能垒为254.0kJ·mol~(-1),均来自于质子从手性碳向氨基氮迁移的过渡态.2个水分子作质子迁移媒介时,构型1主反应通道b的决速步能垒降到124.1kJ·mol~(-1),再考虑到水溶剂化效应时,决速步能垒降到104.0kJ·mol~(-1).结果表明:水分子的催化和水溶剂助催化的共同作用,使质子迁移反应能垒大幅度降低.(本文来源于《复旦学报(自然科学版)》期刊2017年04期）
晏子俊,李万玉,李瑶,胡雪原,何丹[6]（2017）在《天门冬酰胺酶纳米囊的药动学及生物等效性研究》一文中研究指出作者研究了载天门冬酰胺酶(Asparaginase,AN)自组装透明质酸-聚乙二醇(Hyaluronic acid-graft-poly(ethylene glycol),HA-g-PEG)/γ-环糊精(γ-cyclodextrin,γ-CD)纳米囊(HA-gPEG/γ-CD nanocapsules loaded with AN,AHRPs)在雄性SD大鼠体内的药代动力学和生物等效性。考察了AHRPs的透射电镜、粒径、Zeta电位、包封率,并分别测定大鼠静脉给予AHRPs和游离AN后,不同时间点大鼠血浆样品中AN的活性。采用DAS 2.1.1软件计算药动学参数,对AHRPs和游离AN进行生物等效性评价。经计算,AHRPs的平均粒径为(410.30±3.20)nm,Zeta电位为(-31.40±1.65)m V,平均包封率为(42.80±4.37)%。AHRPs和游离AN的主要药动学参数AUC(0~48 h)分别为(104.01±1.68)U/(m L·h)和(46.38±1.98)U/(m L·h),AUC(0~∞)分别为(131.03±19.67)U/(m L·h)和(51.44±3.01)U/(m L·h),t1/2分别为(4.31±1.53)h和(1.86±0.38)h。与游离AN比较,AHRPs的AUC(0~48 h)、AUC(0~∞)和t1/2分别提高了2.24、2.55和2.32倍。AUC(0~48 h)、AUC(0~∞)和Cmax的90%可置信区间分别为77.1%~78.7%、76.7%~78.3%、98.9%~100.5%。AHRPs延长了AN在大鼠体内的生物半衰期,提高了AN在大鼠体内的生物利用度,且AHRPs与游离AN不具有生物等效性。(本文来源于《食品与生物技术学报》期刊2017年05期）
万胜利,李瑶,何丹,晏子俊,张景勍[7]（2017）在《天门冬酰胺酶羟丙基-β-环糊精脂质体的稳定性及相关机制的初步研究》一文中研究指出目的考察天门冬酰胺酶(L-Asp)羟丙基-β-环糊精脂质体(AHL)的稳定性及相关机制。方法采用逆相蒸发法制备AHL,对其低温放置稳定性、热稳定性、酸碱稳定性、血浆稳定性、抗胰蛋白酶水解能力及相关机制进行初步研究。结果 AHL体外稳定性都优于L-Asp,能阻止L-Asp构象的改变。结论 AHL能提高L-Asp的稳定性。(本文来源于《华西药学杂志》期刊2017年02期）
万胜利,何丹,晏子俊,张严方,张景勍[8]（2016）在《壳聚糖修饰的L-天门冬酰胺酶脂质体的稳定性》一文中研究指出考察壳聚糖修饰的L-天门冬酰胺酶脂质体在体外的稳定性。分别从最适pH、最适温度、储存稳定性、酸碱稳定性、热稳定性,以及抗胰蛋白酶水解的能力等方面,对比游离L-天门冬酰胺酶及壳聚糖修饰的L-天门冬酰胺酶脂质体。结果表明:游离L-天门冬酰胺酶和壳聚糖修饰的L-天门冬酰胺酶脂质体的最适pH分别为7.5和7.0,最适温度分别为60℃和50℃,壳聚糖修饰的L-天门冬酰胺酶脂质体的储存稳定性、酸碱稳定性、热稳定性,以及抗胰蛋白酶水解的能力均优于游离酶。因此,壳聚糖修饰的L-天门冬酰胺酶脂质体能明显提高游离酶的稳定性。(本文来源于《食品与生物技术学报》期刊2016年10期）
谢江川,何丹,晏子俊,周云莉,张景勍[9]（2016）在《天门冬酰胺酶聚乙二醇-透明质酸/磺丁基-β-环糊精纳米粒体外稳定性的初步研究》一文中研究指出目的制备含载天门冬酰胺酶(Asp)的自组装聚乙二醇-透明质酸/磺丁基-β-环糊精纳米粒(THSCD),并初步研究两者在体外的活性以及稳定性。方法采用自组装法制备THSCD;分别从最适温度、最适p H、酸碱稳定性、热稳定性、贮存稳定性、血浆稳定性、抗胰蛋白酶水解能力、部分金属离子及有机化合物影响来考察THSCD中Asp和游离Asp的差异。结果THSCD的最适温度为50℃,游离Asp最适温度为60℃。THSCD的最适p H为6.5,游离Asp的最适p H为7.5。THSCD的热稳定性、贮存稳定性、酸碱稳定性、血浆稳定性测定、抗胰蛋白酶水解能力和抗部分金属离子和有机化合物能力均比游离Asp好。结论 THSCD在提高了Asp在体外活性的同时,也明显地增强了游离Asp在体外的稳定性。(本文来源于《华西药学杂志》期刊2016年02期）
晏子俊,谢江川,何丹,胡雪原,张景勍[10]（2016）在《天门冬酰胺酶自组装空心纳米囊的药代动力学及生物等效性》一文中研究指出目的研究载带天门冬酰胺酶(AN)的自组装透明质酸-聚乙二醇(HA-g-PEG)/磺丁基-β-环糊精(S-CD)纳米囊(AHSPs)在雄性SD大鼠体内的药代动力学和生物等效性。方法考察了AHSPs的透射电镜、粒径和Zeta电位,并分别测定大鼠静脉给予AHSPs和游离AN后,不同时间点大鼠血浆样品中AN的活性。采用DAS 2.1.1软件计算药动学参数,对AHSPs和游离AN进行生物等效性评价。结果经计算,AHSPs的平均粒径为413.80±10.97 nm,Zeta电位为-20.37±2.38 m V。AHSPs和游离AN的主要药动学参数AUC_(0~48 h)分别为137.34±1.82 U/m L和46.38±1.98 U/m L,AUC_(0~∞)分别为164.66±6.88 U/m L和51.44±3.01 U/m L,t1/2分别为4.62±0.60 h和1.86±0.38 h。与游离AN比较,AHSPs的AUC_(0~48 h)、AUC_(0~∞)和t1/2分别提高了2.96、3.20和2.48倍。AUC_(0~48 h)、AUC(0~∞)和Cmax的90%可置信区间分别为75.0%~76.5%、74.3%~76.1%、95.1%~96.7%。结论 AHSPs延长了AN在大鼠体内的生物半衰期,提高了AN在大鼠体内的生物利用度,且AHSPs与游离AN不具有生物等效性。(本文来源于《南方医科大学学报》期刊2016年01期）
天门冬酰胺酶论文开题报告
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
在大自然中,L-天门冬酰胺酶主要存在于动物、植物和微生物中,是利用大肠杆菌进行发酵法而生产的。L-天门冬酰胺酶是一种酰胺基水解酶,在血液中能将L-天门冬酰胺酶的酰胺基进行水解,并生成天门冬氨酸和氨,由于繁殖活跃的白细胞摄取不到足够量的L-天门冬酰胺而受到生长抑制,从而能起到治疗白血病的功效。通过两种工艺路线进行叙述与探讨,结论得出优化后的工艺路线更有利于天冬酰胺酶的保存和操作。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
天门冬酰胺酶论文参考文献
[1].高晓艳,刘梅,田小清,吕润林,鲁英娟.Wnt信号通路抑制对急性白血病天门冬酰胺酶耐药性的影响[J].川北医学院学报.2019
[2].张岩,许友强,周婷婷,李宁,李雨艳.L-天门冬酰胺酶两种工艺路线探讨[J].世界最新医学信息文摘.2018
[3].陈卓静,关亚飞,丁城,吴茜.葡萄糖-天门冬酰胺体系中丙烯酰胺的生成规律研究[J].中国调味品.2017
[4].万胜利,刘煜莹,李瑶,何丹,张景勍.壳聚糖修饰的L-天门冬酰胺酶脂质体血浆稳定性及药动学的初步研究[J].中国药学杂志.2017
[5].崔凤午,王佐成,喻小继,高峰,闫红彦.基于氨基作氢迁移桥梁天门冬酰胺的旋光异构机理及水的作用[J].复旦学报(自然科学版).2017
[6].晏子俊,李万玉,李瑶,胡雪原,何丹.天门冬酰胺酶纳米囊的药动学及生物等效性研究[J].食品与生物技术学报.2017
[7].万胜利,李瑶,何丹,晏子俊,张景勍.天门冬酰胺酶羟丙基-β-环糊精脂质体的稳定性及相关机制的初步研究[J].华西药学杂志.2017
[8].万胜利,何丹,晏子俊,张严方,张景勍.壳聚糖修饰的L-天门冬酰胺酶脂质体的稳定性[J].食品与生物技术学报.2016
[9].谢江川,何丹,晏子俊,周云莉,张景勍.天门冬酰胺酶聚乙二醇-透明质酸/磺丁基-β-环糊精纳米粒体外稳定性的初步研究[J].华西药学杂志.2016
[10].晏子俊,谢江川,何丹,胡雪原,张景勍.天门冬酰胺酶自组装空心纳米囊的药代动力学及生物等效性[J].南方医科大学学报.2016
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